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标题:【讨论帖】蛋白研究技术答疑专贴

viviwang1987[使用道具]
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21
 
您好,版主。我现在做唾液淀粉酶糖基化与非糖基化,以WB分离二者。
大致条件如下:
1、电泳:浓缩胶60V、10min左右,分离胶100V、60min左右;
2、转膜:湿转,100mA、2.5h;
3、封闭:5%BSA+TBST(tween-20浓度0.058%),室温下、床2h;
4、一抗与二抗按说明书稀释。稀释液与清洗液与封闭液配方一样,均为1.33%BSA+TBST(tween-20浓度为0.025%);
5、ECL发光法。
结果如图,您能不能给分析下,我个人感觉电泳后的环节出问题。上样量足够、电泳分离得蛮好。谢谢噢。

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"从图上结果来看,个人感觉除背景有些深和主带有些虚外,其他都还可以。背景深可能是因为一抗孵育完以后洗膜不彻底,主带虚的话可以尝试适当增加一抗孵育时间。如果目的蛋白的分子量过大不建议使用高电流转膜。个人意见,仅供参考。"

谢谢版主的建议。我做的目的蛋白分子量分别是57kD和62kD,个人严重怀疑在转膜环节出问题,电转液配置没问题、新鲜,以前用您讲的湿转、低电流100mA、2h,PVDF膜是0.2um,做了DAB结果还不错。那现在准备转膜做回以前的条件,就是低电流100mA、2h,不过想换个0.45um的PVDF膜。那现在请教您,这个膜的选择应该没问题吧?我选择孔径大的膜会不会有渔网拦不住沙子的顾虑?hope 4 ur reply!
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您好,请问您那儿有“丙酮沉淀”的相关知识和操作吗?

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个人认为:您可以去查找一些文献,有关丙酮沉淀法提取蛋白的相关文章有很多,里面有介绍的,做2D电泳很多都是用这种方法的。
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huifeng0516[使用道具]
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个人认为:您可以去查找一些文献,有关丙酮沉淀法提取蛋白的相关文章有很多,里面有介绍的,做2D电泳很多都是用这种方法的。
谢谢您。

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很不好意思,我只是做脂肪组织的普通WB,感觉浓度测的不准、导致内参都不一致,请问您有什么意见和指导。
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bring[使用道具]
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蛋白类药物的空间构象与其生物活性是密切相关的,请问在制药时,都是有哪些方法来测定不同批次的药品间空间结构的变化?
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谢谢您,再请问,在加入丙酮之后是不是就应该把脂肪组织剪碎?用不用超声裂解?还是用破碎仪破碎?
另外,5000 g相当于多少的rpm?我们用的是Eppendoff 5810R的低温离心机。
再次感谢。

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脂类组织我没提取过,丙酮沉淀应该是用裂解液溶解后的样品,因为丙酮沉淀后样品不易溶解。离心机的g和rpm的换算跟转子的半径有关,Eppendoff 5810R的低温离心机直接按“rpm/rcf"就可以转换了
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NBA[使用道具]
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为什么在ELISA封闭时有人用BSA,有人用脱脂奶粉?用BAS和脱脂奶粉有什么不同?两者是否用相同的浓度?

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脱脂奶粉: 5%, clean backgroud, but disguises some antigens
BSA: 3%, good signal strength
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douding66[使用道具]
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27
 
老师您好,我想请教您一下,最近想 做细胞转染,但是用公司提出的小提中量试剂盒提出的质粒都在100多微克每毫升,这样做转染的话要加很多的液体,这样会不会把整个体系都稀释了,这样低的浓度是不是不适用于细胞转染,怎么才能提高质粒的浓度呢,我已经重新转化过了,还是很低。
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NBA[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 douding66 于 2013-5-22 19:52 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
老师您好,我想请教您一下,最近想 做细胞转染,但是用公司提出的小提中量试剂盒提出的质粒都在100多微克每毫升,这样做转染的话要加很多的液体,这样会不会把整个体系都稀释了,这样低的浓度是不是不适用于细胞转染,怎么才能提高 ...

您好,从我们的经验看,提高质粒浓度可用以下两种方式:1.您可以用冻干机对保存质粒的原液进行浓缩,通过挥发掉多余的水分来起到浓缩效果。2.您也可以用多抽提几管质粒然后合并它们,再加入乙醇将质粒沉淀出来,离心获得沉淀,并彻底晾干(将乙醇完全挥发掉),然后重新加入DNA溶解液体(水,TE等)。
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abc816[使用道具]
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蛋白类药物的空间构象与其生物活性是密切相关的,请问在制药时,都是有哪些方法来测定不同批次的药品间空间结构的变化?

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简单的办法是采用圆二色谱扫描。

终极解决方案是进行X-ray晶体衍射。小肽类可以用核磁共振。
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jujuba[使用道具]
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学习中,请问:我目前在进行蛋白磷酸化研究,在无特异性磷酸化抗体时,可选择通用型磷酸化抗体,我想请问免疫沉淀后用磷酸化抗体western与构建标签融合蛋白再进行免疫沉淀western有何区别?谢谢!
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