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标题:【讨论帖】SDS-PAGE电泳求助专用帖

tangxin_80[使用道具]
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我用的是肺磷癌组织标本,上样量为20微克总蛋白,用SANTA CRUZ 的抗兔的针对annexin II 的抗体,1:1000稀释,显影后怎么会有两条带,我用10%和12%的胶都试了一次,都是两条带,是样品的时间久了吗?还会不会有其他原因,希望各位高手指点一下迷津,谢谢!!

你好!我做的蛋白电泳也有这样的现象,而且是阳性对照的纯品!
我看资料解释说:是蛋白在上样处理过程中构象变化,可能出现的结果.
你查看一下蛋白结构和性质,可能会有帮助!
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pencil菲[使用道具]
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样品处理:我是两毫升菌液离心沉淀后加80ulPBS加20ul 5乘上样缓冲液,煮沸5分钟,离心 取15ul 上样的.
我的条带上面是清晰的下面有些糊,因为只有15KD左右大小所以用的是15%的胶.可是请问小蚂哥:
胶的浓度高为什么会糊呢?觉得浓度高应该分得更清楚啊
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abc816[使用道具]
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请教楼主一个问题,我个显影的结果一片黑,整个膜在胶片上都是黑色,上面可以看得到条带,但是这么高的背景是什么原因呢?我一抗的稀释倍数是1:200,二抗是1:5000,暴光时间是8分钟,最可能的原因是暴光时间久了还是抗体稀释倍数小了呢?
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ukonptp[使用道具]
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请教楼主一个问题:
做SDS-PAGE,点样后一加上电压开始跑,有的点样孔中的溴酚兰就开始向下漏,一直漏到浓缩胶和分离胶的交界面上,然后横向扩散。当其他孔中的溴酚兰迁移到分离胶和浓缩胶的分界面后,扩散的溴酚兰再同其他孔的溴酚兰一起向下迁移。脱色后发现出现渗漏的孔对其他孔有影响,但不严重。每次大约有1-2个孔出现这种现象。请问这种现象是什么原因造成的,应如何改进?

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不知道你所说的漏是什么样的?
我想可能有两个原因会出现这样的情况:
1、胶没有充分凝固;
2、玻璃板与胶结合的不严密,出现空隙。
自己查找一下,看看是那种原因。
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ukonptp[使用道具]
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样品处理:我是两毫升菌液离心沉淀后加80ulPBS加20ul 5乘上样缓冲液,煮沸5分钟,离心 取15ul 上样的.
我的条带上面是清晰的下面有些糊,因为只有15KD左右大小所以用的是15%的胶.可是请问小蚂哥:
胶的浓度高为什么会糊呢?觉得浓度高应该分得更清楚啊

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PAGE电泳受凝胶孔径大小不同影响,有分子筛的效应,不同浓度的分离胶都有特定的分辨率范围,浓度过大过小都不能有效分离。过高浓度的分离胶可能会导致样品在电场的作用下,涨破凝胶,出现不均匀的分布,出现一种类似拖带现象。
样品处理操作看起来没什么问题,你可以改进一下胶的浓度。
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ukonptp[使用道具]
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请教楼主一个问题,我个显影的结果一片黑,整个膜在胶片上都是黑色,上面可以看得到条带,但是这么高的背景是什么原因呢?我一抗的稀释倍数是1:200,二抗是1:5000,暴光时间是8分钟,最可能的原因是暴光时间久了还是抗体稀释倍数小了呢?

====================================================================================

你先做个DOT-ELISA摸一下抗体工作浓度,另外就是封闭液有没有问题,最后再看看显影时间的问题,可逐一排除
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rxcc33[使用道具]
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请教楼主:
我电泳时,溴酚兰指示剂总压不成一条带,并且跑到底端时开始变黄,不再泳动了,这是什么原因啊
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viviwang1987[使用道具]
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楼主,我想问一下10%分离胶和4%浓缩胶用36mA恒流来跑电泳会不会不适合?是否电流太大了点?
还有,电泳时放把整个电泳槽放在4℃低温下进行电泳是不是合理的?为什么?
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DNA[使用道具]
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楼主:看了 你的帖子,受益非浅!
请教:本人最近在做蛋白纯化,请问各位如何从SDS-PAGE胶中提取蛋白质。曾看到有帖说可以捣碎凝胶,加缓冲液提取。能否请问一下具体方法如何。也请各位高手多多指教。
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utt0989[使用道具]
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请教搂主:我最近在跑一个分子量约170KD的蛋白,基层胶和分离胶都是5%,用的是恒压,100V,跑的效果不是很理想,丽春红染色后100KD以下条带都很清楚,但100KD以上就很模糊了,杂抗体后显影出来也是如此。请问有什么办法可以解决吗,除了5%,浓一点的分离胶可以吗?另外,在同一块胶上,我还需要跑分子量为42的内参,不知道如何才能把这两个蛋白都跑出来,我已经失败了N次了,急盼回复,谢谢
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