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标题:【讨论帖】SDS-PAGE电泳求助专用帖

gogo[使用道具]
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求助各位高手,不知有没有人做过5kD以下的小肽的电泳,请问样品的处理有什么好的方法?
我用Tris-Tricine电泳方法,把样品混在2*Tricine样品缓冲液里,40度处理1小时,但是处理后放置室温20度左右,出现沉淀,不知该怎么办,大家有没有什么好方法?
另外电泳结果目的条带有拖尾如下图,有什么好方法解决


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2013-6-27 16:00
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huifeng0516[使用道具]
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谢谢楼主,搞这个讨论版。我这段时间长期跑SDS-PAGE,遇到很多问题。想问一下waynepionnet ,恒压和恒流跑出的胶有没有差别。

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原理上讲是没有区别的,但实际应用上个人认为还是有一些区别的。恒压电泳的过程中电流是不断减小的,也就是越跑越慢;而恒流电泳的过程中电压是不断变大的,也就是越跑越快。用恒压的可能分辨更好一些,因为刚开始浓缩的时候快一些不要紧,进分离胶后随着电泳进程电流逐渐下降,可以将蛋白较好的进行分离,减少弥散,而恒流的过程恰好相反(个人猜测,没做过比较)。我们实验室都跑恒压。
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好像不对吧?
恒压下,电场强度不变,迁移速度是不变的,不是越跑越慢!
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ukonptp[使用道具]
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求助各位高手,不知有没有人做过5kD以下的小肽的电泳,请问样品的处理有什么好的方法?
我用Tris-Tricine电泳方法,把样品混在2*Tricine样品缓冲液里,40度处理1小时,但是处理后放置室温20度左右,出现沉淀,不知该怎么办,大家有没有什么好方法?
另外电泳结果目的条带有拖尾如下图,有什么好方法解决

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对于低分子量的蛋白凝胶电泳,可适当加些尿素(8M),一来可以促进样品的融解,二来也可以提高凝胶的分辨率。
电泳中出现的拖尾现象也主要是由于样品溶解不佳引起的,可在处理后离心取上清上样。
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谢谢,我的目的蛋白溶解性很好,可能是SDS沉淀,上样BUFFER中8%的SDS
请问降低上样BUFFER中的SDS对电泳有影响吗,我做Tricine-SDS-PAGE电泳。
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ukonptp[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 one 于 2013-6-27 16:04 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

谢谢,我的目的蛋白溶解性很好,可能是SDS沉淀,上样BUFFER中8%的SDS
请问降低上样BUFFER中的SDS对电泳有影响吗,我做Tricine-SDS-PAGE电泳。

没有影响,8%确实有点高,可适当降低点。
如果是SDS结晶的话,对电泳是没有影响的,可以离心后取上清上样即可!
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tudou85[使用道具]
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请问一下,我是第一天做细菌诱导,第二天做SDS-PAGE电泳,第一天诱导完之后的细菌应该放4度,-20度,还是室温保存?跑完电泳后剩余样品想保存,又应该保存于多少度?温度对蛋白的降解有什么影响?我是新手,望各位大侠指教!感激不尽!
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文献上说,一般跑恒压的时候,浓缩胶跑较低的电压(如60V左右),分离胶跑较高的电压(如100V左右).我这样跑效果不好.后来摸索着反过来,浓缩胶跑100V,分离胶跑60V,反而效果很好,这是为什么?
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昨天转膜的时候没有转完全,因为用预染marker了,胶上还有预染marker的条带,条件是以前一样的条件,为什么只转了一部分呢?我用的是biorad的半干转,80mA,2h,在转的过程中,我发现电压好像没有太大变化,我当时还挺纳闷的,是不是短路了?如果这样的话应该应该一点也转不到膜上啊,还是时间不够长,以前都是这个条件,也都转上去了,可这次为什么呢?
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ukonptp[使用道具]
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请问一下,我是第一天做细菌诱导,第二天做SDS-PAGE电泳,第一天诱导完之后的细菌应该放4度,-20度,还是室温保存?跑完电泳后剩余样品想保存,又应该保存于多少度?温度对蛋白的降解有什么影响?我是新手,望各位大侠指教!感激不尽!

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细菌诱导完后可放4c就行了,此时细菌几乎不生长。不要放在室温。
电泳多余的样品如果段时间内就用的话,可放4c,时间长的话可放-20c保存。
蛋白的降解与温度没有直接的关系,只不过在适当的温度下,促进蛋白质降解的水解酶活力高,可导致蛋白的降解。
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