蛋白质与蛋白组学

没有关系，该加多少就加多少，关键是浓缩胶缓冲液的pH调整到6.8，这很关键，每次调pH时，注意校正pH计。

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在调电极缓冲液时加入很多NAOH才调到8.3,过多的NAOH对跑胶有影响吗

若您的溴酚兰跑到底了，那么就是一些小肽，分子量比溴酚兰大不了多少。
也有一种可能是玻璃板没有刷干净，玻璃表面可能带有一些蛋白，这些蛋白
可能也会跑在溴酚兰之前。另外，缓冲液最好过滤后使用。

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请问:我最近跑sds-page 溴酚蓝条带和蛋白带很接近,有的甚至在溴酚蓝条带的前面,是何原因呢?

六一厂的还可以。

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急问：
国产电泳仪什么牌子比较好
我们想作SDSPAGE
还有核酸蛋白接受仪什么牌子比较好阿

虽然我做了不少SDS－PAGE，但是对其中的某些步骤还不甚了解，我的意思是说不知道有些操作的目的，比如说样品要和一定量的buffer混合这一步，有时有2×buffer（10微升样品加10微升buffer），有时用5×buffer（20微升样品加入5微升buffer），这些buffer的配置是有一定差别的，但是采用何种buffer以及加入的量有没有一个线性的关系呢？
还有一个很愚蠢的问题，请不要笑话我。变性SDS电泳的电压和电流最佳是多少，我们实验室一直采用200v，电流60mA，但是我发现好多人跑胶的电压和电流都比我们实验室用的低好多，我们实验室的操作对吗？

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其实加buffer的量没有什么很严格的限制，一般配置上只是其中组分的量多少问题，最后加完了，都是把buffer变成了1×的了，一定要保证buffer是足够的，让SDS能与蛋白充分结合就好。用5×buffer只是在蛋白浓度低时能够提高你的蛋白上样量，而不至于使样品被buffer进一步稀释；如果样品浓度大的话，可以用2×buffer
SDS-PAGE的电压和电流，只要按照你们实验室的常规操作就可以了，既然你们每次做的电泳结果没有问题，还怀疑什么呢？
不同实验室的电泳槽产品质量不一样，能承受的电压等条件也不同，有的槽子不能用大电压的。