蛋白质与蛋白组学 » 讨论区 » 经验共享 » 【讨论帖】SDS-PAGE电泳求助专用帖

采购询价

点击提交代表您同意 《用户服务协议》 《隐私政策》

 
需要登录并加入本群才可以回复和发新贴

标题:【讨论帖】SDS-PAGE电泳求助专用帖

ukonptp[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 103464
精华 5
积分 796
帖子 992
信誉分 110
可用分 5846
专家分 50
阅读权限 255
注册 2013-1-11
状态 离线
61
 
楼主你好!
我在跑15%的胶的时候mark的某个分子量条带处(比如在15kd处),本来是单一的条带怎么会出现挨的很进的两条呢?

===================================================================================================

这种现象是仅出现在marker泳道,还是别的泳道也有?同一批MARker一直都是这样吗?除你说的15kd,在别的分子量上有没有这种现象?
最好把你的图发上来看看,分析起来比较直观一点?
顶部
gogo[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 77052
精华 0
积分 821
帖子 1341
信誉分 100
可用分 7487
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-11-12
状态 离线
62
 

各位大侠,我有一问:
我跑Tricine-SDS-PAGE电泳,目的蛋白理论上是5kD,但是跑出来却是6-7kD左右,与理论值有一定差距,不知是何原因?
我的目的蛋白有43个AA,酸性和碱性AA20个,听说氨基酸组成对电泳结果有一定影响,但心理还是没底,有没有关于氨基酸组成与电泳结果的文献啊? 小弟先谢谢了!
顶部
ukonptp[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 103464
精华 5
积分 796
帖子 992
信誉分 110
可用分 5846
专家分 50
阅读权限 255
注册 2013-1-11
状态 离线
63
 
从你的描述来看,操作方法基本没有问题,但有两处不妥:
1、是在转移膜用甲醇处理后,应在蒸馏水中漂洗后再移至buffer中,残留的甲醇可能会使蛋白不能有效转移;
2、转膜后封闭可放在4C过夜,而不是加一抗过夜,抗体反应的过程最好在摇床上进行,静置低温的环境可能导致抗体不能和抗原有效的反应。
提几点排除问题的建议:
1、确定电泳没有问题:先用你的蛋白跑电泳然后染色看看,是否能够出现正常条带,同时确定上样的浓度;
2、确定转膜没有问题:转膜后用丽春红染色,同时把转移后的胶染色(考染或银染),看看是否转移上或是否转移充分。
3、确定免疫反应没有问题:可用电泳的抗原包被膜,做DOT-ELISA,主要摸一下一抗浓度,同时也确定抗原抗体之间是否能够正常反应。
确定上述三个环节都没有问题,再进一步实验。
顶部
ukonptp[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 103464
精华 5
积分 796
帖子 992
信誉分 110
可用分 5846
专家分 50
阅读权限 255
注册 2013-1-11
状态 离线
64
 
各位大侠,我有一问:
我跑Tricine-SDS-PAGE电泳,目的蛋白理论上是5kD,但是跑出来却是6-7kD左右,与理论值有一定差距,不知是何原因?
我的目的蛋白有43个AA,酸性和碱性AA20个,听说氨基酸组成对电泳结果有一定影响,但心理还是没底,有没有关于氨基酸组成与电泳结果的文献啊? 小弟先谢谢了!

==============================================================================

http://www.dxy.cn/bbs/actions/archive/post/2565378_1.html
帮你查了一份以前战友发的帖子,详细的讨论了蛋白质中氨基酸的酸碱性与电泳间的关系,你可参考一下!
顶部
49888[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 77494
精华 0
积分 776
帖子 1211
信誉分 100
可用分 6906
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-11-17
状态 离线
65
 

Number of amino acids: 44

Molecular weight: 5012.5

Theoretical pI: 5.34

Amino acid composition:

Ala (A) 2   4.5%
Arg (R) 1   2.3%
Asn (N) 1   2.3%
Asp (D) 2   4.5%
Cys (C) 0   0.0%
Gln (Q) 3   6.8%
Glu (E) 8   18.2%
Gly (G) 2   4.5%
His (H) 0   0.0%
Ile  2   4.5%
Leu (L) 2   4.5%
Lys (K) 8   18.2%
Met (M) 2   4.5%
Phe (F) 1   2.3%
Pro (P) 2   4.5%
Ser (S) 5   11.4%
Thr (T) 3   6.8%
Trp (W) 0   0.0%
Tyr (Y) 0   0.0%
Val (V) 0   0.0%

Asx ( 0   0.0%
Glx (Z) 0   0.0%
Xaa (X) 0   0.0%

Total number of negatively charged residues (Asp + Glu): 10
Total number of positively charged residues (Arg + Lys): 9

谢谢,你给的连接我看了,还是不能解释我的实验结果啊?
上面是我目的蛋白的氨基酸组成,不明白我的SDS-PAGE 结果为什么会差1kD?
顶部
8princess8[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 75310
精华 1
积分 664
帖子 821
信誉分 103
可用分 5056
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-10-21
状态 离线
66
 
在其它条件相同情况下,我用12%分离胶可以跑现蛋白条带,而用6%分离胶却跑不出蛋白条带? 我的目的蛋白分子量为100、120KD,不知可否用12%分离胶?

曾跑过大分子量蛋白的电泳,应该不需要6%的胶来做,5%的浓缩胶,10%左右的分离胶应该可以满足要求了。选择多大的胶主要还是要以能否分离出目的蛋白为准,可以在电泳后把分离胶和浓缩胶同时染色,看是否有蛋白留在浓缩胶中。

谢谢指点。我用6%、8%、10%、12%分离胶试过。6%分离胶只见一条竖的蛋白痕迹,8%的在一条竖的蛋白痕迹中可见一条横带,10%的在一条竖的蛋白痕迹中可见三条横带,12%可见分离清楚的横条带。不知何原因。
顶部
tianmei001[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 73832
精华 1
积分 585
帖子 806
信誉分 102
可用分 4823
专家分 10
阅读权限 255
注册 2011-9-28
状态 离线
67
 

想问一下关于样品缓冲液得问题,请指教。
我看到有好几种不同得样品缓冲液:5x,6x,还有2x的,这些数字指的什么东西的浓度呢?在植物材料上用那种好些?另外,在样品缓冲液中,用巯基乙醇的作用和DTT的作用是完全一样的么?在量上面有什么区别?
我想配一个6x的样品缓冲液,成分是这样的(总体积约36ml):
1.5 M tris-Hcl(PH6.8) 6ml
β-巯基乙醇 10.8ml
甘油 18ml
10%SDS 3.6g
溴芬蓝 少量
这样配出来的好象不是兰色的,是金黄色(偏红),因为以前用人家配好的是兰色的,所以,不知道是否在配的过程中还要注意什么问题了?
PS: 这个方法是从同学那边抄来的,所以还不一定正确。
顶部
bring[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 74282
精华 0
积分 597
帖子 914
信誉分 100
可用分 5326
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-10-9
状态 离线
68
 

楼上的做柚子的兄弟:所谓5x,6x,还有2x指的是上样缓冲液的倍数,标准是1x的loading buffer,那么5x,6x,还有2x指的是你的loading buffer中的各组分的浓度是标准的1x loading buffer的5倍、6倍、2倍。一般我用都是用2x的loading buffer,这样使用的时候只要和样品1:1混合变性就可以了。比较方便,不要再计算。
1x loading buffer:
62.5mmol/L Tris-HCl pH6.8,2% SDS ,10% v/v甘油 ,5%β—巯基乙醇或100mmol/L DTT
你可以按这个换算一下。
一般说来溴酚兰加太多的话,颜色是会偏深,出现偏红的颜色,其实溴酚兰也就是起个指示作用,能够清楚的显示颜色就可以了,不用加太多。
用巯基乙醇的作用和DTT的作用是完全一样的,只是DTT相对更稳定一些,不易分解失效。所以loading buffer中建议使用DTT,这样配完可以分装在离心管中-20度保存,要用的时候拿出来化冻就可以用了,而如果加ME就不行了,一定要现加现用。
顶部
bring[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 74282
精华 0
积分 597
帖子 914
信誉分 100
可用分 5326
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-10-9
状态 离线
69
 
不准确吧. 胶浓度与欲分离的分子量有关. 比如二三十K的可以选15%的胶, 而五六十K的可以选12%, 或降至10%左右.
不过说老实话, 100K, 120K的没专门跑过, 大概可以考虑用略低于10%的浓度吧.

===========================================================================================================

可能有些误会,我所说的和你的意思其实是一样的。2、30K的蛋白要跑10%的胶也能跑,只是分离不好,因为胶浓度太稀,分辨率不够,但是SDS-PAGE用的是分子筛原理应该是没错的吧。就像层析,要想分辨小分子量的物质就要用分辨率高的柱子是一样的。
顶部
guagua[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 72040
精华 2
积分 732
帖子 1016
信誉分 104
可用分 5955
专家分 20
阅读权限 255
注册 2011-9-3
状态 离线
70
 
Number of amino acids: 44

Molecular weight: 5012.5

Theoretical pI: 5.34

Amino acid composition:

Ala (A) 2   4.5%
Arg (R) 1   2.3%
Asn (N) 1   2.3%
Asp (D) 2   4.5%
Cys (C) 0   0.0%
Gln (Q) 3   6.8%
Glu (E) 8   18.2%
Gly (G) 2   4.5%
His (H) 0   0.0%
Ile  2   4.5%
Leu (L) 2   4.5%
Lys (K) 8   18.2%
Met (M) 2   4.5%
Phe (F) 1   2.3%
Pro (P) 2   4.5%
Ser (S) 5   11.4%
Thr (T) 3   6.8%
Trp (W) 0   0.0%
Tyr (Y) 0   0.0%
Val (V) 0   0.0%

Asx ( 0   0.0%
Glx (Z) 0   0.0%
Xaa (X) 0   0.0%

Total number of negatively charged residues (Asp + Glu): 10
Total number of positively charged residues (Arg + Lys): 9

谢谢,你给的连接我看了,还是不能解释我的实验结果啊?
上面是我目的蛋白的氨基酸组成,不明白我的SDS-PAGE 结果为什么会差1kD?

=========================================================================================================

我让你看的目的是想说明氨基酸的组成,从理论上来说在SDS-page电泳中对试验结果应该是没有影响的,电泳中条带的位置只与分子量大小相关。由于在样品处理的过程中,加入了大量的SDS和还原剂,使蛋白解离成线性并在SDS的包裹下形成椭球形,由于SDS的存在,其所带的负电荷远远超过了蛋白分子本身的电荷,而使SDS-蛋白复合物在电场的作用下只与蛋白的分子量大小相关。
现在出现这种问题,可建议从两个方面找原因:
1、电泳的样品buffer有没有问题?可建议现配一次,跑跑看。因为现在大多都泳DTT作为还原剂,如果保存不当的话,可能会使其被氧化,而不能充分破坏蛋白分子中的二硫键,而是分子量大小不与蛋白位置呈正相关。
2、回到蛋白质的本身去找问题,比如你的蛋白是天然的还是人工表达的或是合成的,测序了吗?可是你的目标蛋白?可能的话可以作个免疫印迹鉴定一下。
顶部