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标题:【求助】肠激酶酶切后出现规律的非特异条带

cwcwcww[使用道具]
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我遇到了相同的问题,用EK酶切有严重的非特异性条带出现。融合蛋白20K,标签17K,目的肽段3K,EK过夜切后有17K和14K两条带出现,20K处的条带完全消失。不明白这是怎么回事。

蛋白之安基兄提到EK可以错误切割thrombin位点,可有相关的文献依据?怎样避免类似的错误切割呢?
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大家好,我以前也用过EK,
切的是Trx,摸索了很多条件,但总不成功,切出来的图跟楼主的一模一样!!!
想在这里统计一下,请问以上用过EK的战友们,你们是不是也是切的Trx呢?
如果有问题的都是Trx,而切别的标签就没问题,就说明Trx确实有EK识别位点。以后可以注意一下,以防以后的战友再出现这样的麻烦。
谢谢!
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我遇到了相同的问题,用EK酶切有严重的非特异性条带出现。融合蛋白20K,标签17K,目的肽段3K,EK过夜切后有17K和14K两条带出现,20K处的条带完全消失。不明白这是怎么回事。

蛋白之安基兄提到EK可以错误切割thrombin位点,可有相关的文献依据?怎样避免类似的错误切割呢?

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您好!
20K的条带没了,说明切的还可以啊,3K的条带您应该能看到啊,您跑tricine胶可以看到3K的条带,但您的上样量要大.
我没有搜索这类文献,做的多了,个人的经验啊,仅供参考,呵呵
不可以避免啊,惟有多加EK的量.
我最近也做了个4K的目的蛋白,呵呵
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很遗憾,这次在柱上酶切,酶的用量也足够大,仍然没有切出来。
打算再尝试最后一次,还不行就放弃。
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如影随形[使用道具]
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很奇怪,我的实验证明,我的目的片段上的终止子没有起到作用,终止发生在载体的终止子上!
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flower-201[使用道具]
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大哥们:
我遇到和大家相似的情况,我的融合蛋白21kd左右,酶切前目的条带很纯
酶切6-20小时后,产生了两天新的条带,分别为17kd和15kd位子,而且除了21kd原条带没有其他的新条带。
我用酶切后的样品再上ni柱,在线280nm检查没看到吸收峰,流穿、洗脱液分别跑电泳
结果流穿中没有,0.1M咪唑洗脱液中有17kd和15kd的条带。
郁闷!!!
酶切后两条带怎么都带了his呢?
目的蛋白也不见!!!
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fox_79[使用道具]
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硫氧蛋白大小到底是多少啊?我用空的PET32载体与克隆了目的基因的载体加IPTG诱导后跑电泳,发现空的PET32载体在20多kd的位置多一条带啊。
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DONT[使用道具]
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trx标签可以被EK酶降解,随着反应时间的延长和温度的升高,降解程度越严重,且温度影响更甚。
建议低温,长时间酶切,我的蛋白就是酶解16度 20个小时。
然后可以有适量咪唑,降低EK酶活性,防止或减少非特异酶切,前提是你的融合蛋白够好切,我的蛋白可以1u:30mg,然后在100mM咪唑的情况下,还是能完全切开,这时的trx基本上不会被降解,如果不够好切,建议在DDDDK 后添加几个柔性氨基酸(A,I等),充分暴露位点。可以考虑10或者20mM的咪唑,这也可以省去了提纯融合蛋白后透析的那一步,减少蛋白损失。祝实验成功
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DONT[使用道具]
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还建议一下,电泳胶集层胶染色前可以去掉,减少染色脱色时间以及减少染液的浪费
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luoliqiong[使用道具]
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大家好,看到上面的讨论结果才晓得原来大家都遇到了跟我类似的问题
我用的也是PET32载体,融合表达后分子量是29KD,我用EK酶酶切之后发现我的蛋白被切的很乱,其中出现17KD(应该这个才是正常的标签带),15KD,14KD,12KD(这个是我的目标带)四条带。而且我需要的12KD的目标带很弱,最浓的带在15KD,I4KD位置。我做了WESTERN之后发现17KD,15KD,14KD那些带都带有组氨酸标签,我很是郁闷,因为我要的目标带收率极低,但我也是搞不明白为什么会出现15KD,14KD这些带。如果是切的是凝血酶位点,14KD又是怎么出现的呢?搞不懂,搞不懂。
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