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标题:【讨论帖】分享你做蛋白质组学实验的protocol

vivian4123[使用道具]
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我也是要大量的蛋白,在纯化植物微管蛋白,分析,痛苦中。
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lxh031[使用道具]
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Here is a protocol that I developed to purify small and hydrophobic peptides (4 kDa). The end purpose was for antibody production. Peptides were passively extracted from SDS gel slices. Cells (BL21 Star™(DE3) pLysS) were lysed at room temperature using 50 mM Tris-HCl (pH 8.0) and 5 mM EDTA. Inclusion bodies were collected at 12000g for 30 min at room temperature and followed by 25000g for 10 min after resuspending in the lysis buffer. The pellet was solubilized with Laemmli loading buffer and fractionated by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) (Laemmli 1970; Schägger 1994) using a Tris-Tricine buffer. Protein containing gel slices were frozen in liquid N2 and ground into small pieces. Expressed proteins were then eluted passively at 37°C by soaking in 1% SDS (~500 μl for every 200 μl Vol gel slice) for 1.5 h with constant motion. Eluted proteins along with SDS were injected into rabbits. Surprisingly, they were alive after injection and produced great antiserum. Hope this may help someone. Cheers,
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小螺号[使用道具]
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Ttizol法提取蛋白没人做吗? 效果怎么样,最好是植物蛋白的
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小螺号[使用道具]
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楼主 请问TCA/丙酮是如何配制的,是不是10%TCA,0.07%β-巯基乙醇,丙酮配置
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PCR[使用道具]
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动物组织蛋白提取方法

操作步骤 处理标本 -80°C 取出标本置于碎冰盒中 加入PMSF30ul,PBS1ml洗涤,共3次,滤纸吸干(重复三次),至上清无红细胞 (开启冷冻离心机预冷) 将组织剪碎后移至匀浆器(高压灭菌)中,加入30ul ,1mol/l PH6.8Tris –碱冰浴中完全匀浆 加入NE5ul,室温下匀浆,室温放置20-30min 最后5分钟,现配裂解液(上样缓冲液I 1ml ,DTT 0.012g ,IPG buffer 5ul ,蛋白酶抑制剂 10ul) 分次加入裂解液,冰浴匀浆 匀浆器低速离心1500r/min ×5min(Wash I-20°C预冷) 吸取匀浆液至1.5mlEP管(4°C,12000r/min×30min) 吸取上清(200ul枪至1.5mlEP管中),记录体积 加入3倍体积的沉淀剂I(precipitating agent I)漩涡混匀,冰上孵育15min 加入3倍体积的沉淀剂II(precipitating agent II)漩涡混匀,12000r/min×5min倒掉上清,滤纸吸弃液体蛋白颗粒向外,高速离心15-30s,小枪吸掉上清加入3-4倍于颗粒体积(4oul)的洗剂I(wash reagent I),漩涡混匀,彻底洗涤蛋白颗粒12000r/min×5min,小枪吸弃液体加足够聚合蛋白颗粒的超纯水(25ul),不应太多,漩涡混匀加入-20°C预冷至少1hr的洗剂II1ml(为样本量的10倍,也至少为加水量的10倍)加入洗剂II辅助剂(wash II additive)5ul,漩涡1min,-20°C孵育30min,每隔10min漩涡一次(20-30s/次)12000r/min×5min,吸弃液体,瞬时离心15-30s,彻底吸弃洗涤剂室温风干(不超过5min)至颗粒半透明(不能太干)( 现配裂解液)加入原样本量的裂解液复融,漩涡30s混匀,室温孵育3-5min(漩涡混匀1min或是来回上下颠倒混匀)至蛋白质差不多溶解,太稠,再加适量裂解液室温下(20°C)12000r/min×2-5min(使蛋白样品澄清,储存剩余的蛋白样品于一干净的Ep管中用于更迟的分析,-80°C保存)取10ul样本,加入90ul超纯水(10倍稀释)取10ul 稀释液,加入3.0ml 考马斯G-250比色入=595nm,G-250空白调零,每个样本三个平行,记录A值,根据标准曲线算出蛋白浓度根据上样量确定上样体积,并根据上样体积分装之0.5mlEp管中,冰盒保存,剩余样本-80°C存(上样量/(品浓度×10)上样体积)
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mimili_901[使用道具]
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本人做的是马铃薯蛋白质组学,其块茎蛋白的提取方法一般为:改良三氯乙酸/丙酮沉淀法 根据Görg等(2000)和Hajduch等(2001)的方法稍有改动。其步骤为:取材料约1 g,研磨成细粉末后,按植物材料鲜重1 : 2(w/v)的比例加入蛋白质提取缓冲液2 mL(40 mM Tris-HCl,pH 7.0)。将研碎样品摇匀,并在4 oC条件下放置1 h,充分溶解蛋白质。放置后的样品摇匀,15000 × g离心5 min,上清液同条件下再次离心10 min,收集上清液加入5~10倍体积的预冷丙酮。涡旋振荡后静置于-20 oC,过夜沉淀,12000 × g离心15 min,沉淀重悬于含0.07% β-巯基乙醇的等体积预冷丙酮溶液里(1~2次),12000 × g离心5 min,真空干燥沉淀,得到的粗蛋白质干粉用分析天平进行称重后,-70 oC保存备用,或直接进行下一步提取。
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junhun[使用道具]
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请问有做细菌分泌蛋白的吗?能不能介绍下啊?十分感谢~
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能分享一下植物叶片蛋白提取的方法吗? PS:植物叶片中的高峰度蛋白如Rubisco会干扰电泳结果吗?需不需要用什么专一性抑制剂除掉啊?
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qqq111[使用道具]
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请问能分享一下植物叶片蛋白提取的方法吗?本人刚开始做,中间有很多问题,希望高手能指点一二,非常感谢~~ PS:植物叶片中的高峰度蛋白如Rubisco会干扰电泳结果吗?需要排除干扰吗?应该怎样去除啊?用什么抑制剂比较好?
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owanaka[使用道具]
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请问能分享一下植物叶片蛋白提取的方法吗?叶片中的高峰度蛋白如Rubisco需要用专一性抑制剂降低吗?
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