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标题:【讨论帖】分享你做蛋白质组学实验的protocol

langlang[使用道具]
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current use for sample preparation for gel sample

Preparation for gel sample         Precast gels (INVITROGEN, BioRad)‏         Reduction and alkylation before gel run         Reduce with DTT, DTE or TCEP         Alkylate with Iodoacetamide         See sample prep handbook         Disolve the sample in SDS-buffer without reducing agent         no -mercaptoethanol, no DTT, no DTE         Reduce with 10 mM DTT, DTE, or TCEP         Never use -mercaptoethanol !!!!!!         Add 1/10 of the sample volume 100 mM stock solution         DTT and DTE: 5 – 10 min at 100 C         TCEP: 15 min at 60 C         Cool down to RT         Add 20 mM Iodacetamide and incubate for 30 min at RT         Load and run gel Note: o        Leave one lane free between each lane to be cut o        Do not overload gel o        Run the gel under optimal conditions (Voltage)‏         Coomassie blue stain (colloidal preferred)‏         If you use own Coomassie solution – make it fresh, also destainer         Silver stained gels will be rejected         Stain in new 10 x 10 cm quadratic containers         Do not reuse old ones (contamination)‏         Scan gel (pack between plastic sheets to avoid contamination)‏         Clearly label lanes/bands/areas to be cut and analysed         2-D gel spots‏
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湿转(wb转膜) 配置湿法电转液: 25mM Tris, 192mM glycine,20% v/v methanol, pH 8.3 3.0275 g Tris; 14.413 g Gly; 200 ml 甲醇 蒸馏水稀释到1 L. 至冰 PVDF膜:甲醇(乙醇)浸润10mi=> 纯净水 5min * 2 => 电转液 10 min 滤纸: 电转液 〉10 min Gel: 电转液 30 min 电转液倒入电泳槽中,浸泡夹心板,多孔垫片。 这几步共需要 1.5 L左右的电转液。 1)        红色(+)——〉黑色(-)依次安装 白色边盒-〉多孔垫片-〉滤纸-〉PVDF膜-〉gel-〉滤纸-〉多孔垫片-〉黑色边盒 左上角剪角,P.S安装过程尽量避免产生气泡 2)        转膜三明治装入电转移,并在电泳槽中加入预冻冰盒,电转仪入盆,用冰包埋。 3)        电流 = 凝胶面积*2 mA (30mA) 电转 2-4 小时。 参考转膜时间: 30V过夜,60V3h,100V2h 实验对象对肝癌与肝永生细胞
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tieshazhang[使用道具]
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有没有动物细菌蛋白的的提取方法
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moonlight45[使用道具]
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请问,蛋白质提取的缓冲溶液中,只注明mM的量是多少?
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toy[使用道具]
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昆虫双向电泳概论

1 样品处理,经液氮冷冻后置于-80℃备用。 2 总蛋白的抽提及浓度测定 (1)蛋白裂解液裂解及后续处理
用Bradford法定量蛋白含量,然后根据所需蛋白量分装至离心管中-20℃保存备用。
(2)Brandford法测定蛋白质浓度 蛋白样品浓度测定:用Brandford法,测定标准蛋白和样品的595nm吸收峰处的吸光光度值,采用标准曲线法测定并计算确定样品蛋白质的浓度

         BSA(μL)         ddH2O (μL)         Brandford(mL)         A595
对照         0         300         3         0.000
1         7.5         292.5         3       
1         7.5         292.5         3       
2         15         285         3       
2         15         285         3       
3         22.5         277.5         3       
3         22.5         277.5         3       
4         30         270         3       
4         30         270         3       
5         37.5         262.5         3       
5         37.5         262.5         3       
裂解液         5         295         3       
样品         5         295         3       
样品         5         295         3

表1 蛋白浓度Brandford法 3 双向电泳过程
(1)样品上样:分析用胶蛋白上样量100 μg/块,制备用胶蛋白上样量200 μg/块。蛋白样品水化液(8 mol/L Urea,2% CHAPS,2.8% DTT,0.5% IPG缓冲液)分装为500/管。上样之前先对样品进行如下操作:样品从-20℃冰箱取出后在冰上进行解冻;低速离心沉淀掉离心管壁上的水分;混匀0.5min;15000rpm,15℃离心2min;取100μg体积的蛋白溶液与水化液混合(总体积500μL);混匀1min;离心15000rpm,15℃,2min。
(2)等电聚焦:胶条采用Ph3-10,24 cm的线性干胶条,在IPGphor中25℃按如下程序自动进行溶胀和等电聚焦:30 V,6 h;60 V,6 h;500 V,1 h;1 000V,1 h;1 000 V~4 000 V,1 h;4 000 V~8 000 V,1 h;8 000 V,73 000 V·hr。共约26 h 30 min,等电聚焦总电压时约83 000 V·hr。
(3)胶条平衡:聚焦结束后,先用平衡液I(50 mmol/L Tris-HCI pH 6.8,6 mol/L Urea,30% Glycerol,2% SDS,2% DTT)轻微振荡平衡10 min,再换平衡液II(2%DTT换成2.5% iodoacetamide,其余组分不变)轻微振荡平衡10 min。
(4)转向:平衡好的胶条转移至提前灌制好的聚丙烯酰胺凝胶上,并用琼脂糖封胶液(0.5%琼脂糖,0.002%(W/V)1%溴酚蓝储备液)封住胶条。
主要实验仪器:等电聚焦系统IPGphor及其附件,SDS-PAGE垂直电泳系统Ettan Daltsix及其附件,电泳循环水浴MultiTemp。
4染色过程方法 (1)银染过程: 固定(Fix)60minà敏化(Sensitization)30minà水洗(Wash)3次每次5minà银染 (Silver)20minà水洗(Wash)2minà显色(Develop)2minà终止(Stop)10minà水洗(Wash)3次每次5min。 (2)荧光染色步骤: 固定(Fix)30~60minà水洗(Wash)3次每次15minà染色(Stain)(避光)1.5~2hà褪色(褪色液)3次每次30minà水洗(Wash)3次每次5min。 所有步骤军在摇床上进行,摇速40~60转/分钟。 (3)试剂配制:
银染法:
固定液 100ml醋酸+400ml乙醇+500mlmilli-q
敏化液 300ml乙醇+3.14g乙酸钠+68g醋酸钠+700ml milli-q
银染液 2.5gAgNO3+1000mlmilli-q
显色液 25gNaCO3+400ul甲醛+1000ml milli-q
终止液 14.6gEDTA+1000ml milli-q Pro-QDiamond染色: 固定液 500ml甲醇+100ml乙酸+400ml milli-q 褪色液 50ml 1M Ph4.0乙酸钠溶液+200ml乙腈+750ml milli-q 5双向电泳胶的扫描 总蛋白电泳凝胶的扫描采用本实验室的ImageScanner扫描仪(Bioscience, Amersham)。 磷酸化修饰的蛋白电泳胶的扫描,采用科学楼的TyphoonScanner扫描仪(moleculardynamics, part of Amersham Pharmacia Biotech),激发波长为580nm,吸收波长为532nm。 6双向电泳图分析及割点
采用PharmaciaBiotech公司生产的ImageMaster 2D Platinum 6.0软件,检测蛋白斑点,分析不同样品双向电泳图谱的差异。蛋白斑点绝对含量由该软件对斑点面积和斑点颜色自动检测、计算获得。
割点采用手工方式进行,割点之前事先对要割取的蛋白点进行编号,为避免杂质污染全程操作均须戴帽子和口罩,将切割好的蛋白点放入已编号的离心管中。
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mickeylin[使用道具]
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新手上路 学习了

研一,刚开始接触此方面,感觉植物蛋白的提取方法很多,有没有谁做过血清的蛋白质组提取,可以直接用于2DE,如何设计实验步骤除去血清中的盐类、脂类、 氨基酸、 酚类、 糖类以及核酸等,谢谢
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langlang[使用道具]
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新手,新人,新领域!现在有个烟草叶片差异蛋白质组学小项目,有没有哪位可以告诉我,我可不可以在取样后把烟草叶片冻起来,等待时间充足再磨碎取总蛋白质?冷冻保存的时间和温度是多少为宜?
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dog002[使用道具]
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我感觉用bardford法测定蛋白质浓度有些不准,因为裂解液中本身就含有去污剂,还原剂等干扰物质
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any333[使用道具]
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植物蛋白提取

蛋白提取 (1)取0.5~1.0 g材料,用液氮研磨充分。 (2)加入10 m1预冷的三氯乙酸(TCA)提取液(10%TCA,0.07%DTT,溶解在丙酮中)。充分混合后,放在—20℃1 h。(DTT即DL-Dithiothreitol,中文名为二硫苏糖醇。分子式为C4H10O2S2,常用还原剂,有抗氧化作用) (3)35000 g离心15 min,取沉淀。 (4)加入10 m1预冷的样品洗涤液(0.07%DTT,溶解在丙酮中),充分混合后,放在—20℃1 h。 (5)12000 g离心15 min,取沉淀。 (6)重复步骤(4)和(5)两遍。 (7)去掉上清后,用parafilm封口,用针在膜上扎几个小洞,冷冻干燥。 (8)放于一80℃,或直接进行下一步提取。 (9)取适量干燥后的样品粉末,按20ul/mg的比例加入样品溶解液(9 M尿素,4%CHAPS,1%IPG缓冲液pH 3-10,1%DTT,35mM Tris)。 (10)放在36℃(不能高于37X2)的水浴中1 h,不时振荡。 (11)室温下12000 g离心15 min,取上清(可分两步离心)。 (12)在上清中加入至少4倍体积的预冷丙酮,振荡,放在一20℃1 h,在4℃下12000 g离心10 min,取沉淀,加入适量体积的水或样品溶解液。必要时(如果盐离子浓度比较高)重复此步骤一遍。 (13)放于--80℃,或直接用于电泳。
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junjie05[使用道具]
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求用2-DE鉴定体外培养的动物细胞Co-IP的实验方案
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