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标题:【求助】WB方面求助

kewanqi2011[使用道具]
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通过BCA法检测了蛋白浓度很高了都没有显出来或者非常的弱,该如何调整呢?
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kewanqi2011[使用道具]
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我用western blotting 检测磷酸化P65只是很弱地显示若干个条带,磷酸化IkBa完全不显示出来,而且抗体浓度已经很高了,还是不出来,我到底应该要怎么改进呢?谢谢!
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kewanqi2011[使用道具]
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转膜时温度较高磷酸化会降解吗?
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kewanqi2011[使用道具]
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动物组织的磷酸化的IkBa和磷酸化的P65有没有谁做过,能否分享感受?我做了很多次都做不出来。
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kewanqi2011[使用道具]
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为什么我做的western 条带没有或者是很弱很模糊呢?而别人的是很清晰,蛋白提取过程会影响很大吗?请问是什么原因呢?非常感谢!
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请问WB时整块膜都发光是什么原因啊?非常感谢!

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整张膜发光,在WB中叫做“背景高”,原因主要有经下几方面。
1.一抗二抗浓度高了,主要是二抗,一般二抗稀释都在5000倍以上(有些二抗说明书上要求1000-10000,但做的过程中稀释到10000倍以上的也有),你可以做个二抗稀释度(即在空白的膜上,在不同的位置,用不同稀释度的二抗滴1ul在膜上,在室温下自然凉干,然后用直接发光鉴定)。
2.洗膜的时候不到位,也就是洗膜没洗干净。如果你是15分钟三次的话,可以试试8分钟5次洗膜。
3.实验过程中污染。很多人在做实验时,有些地方根本没蛋白样品,却发光了,就是这种情况。
4.封闭也可以造成背景高,但不是主要原因。有些人省去做封闭的步骤,也不会背景高,这个要看自己的实验。
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那我的这块膜再清洗过后,是否还可以用呢?非常感谢!

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只要保证转膜的时候,蛋白已经转了上去,是可以重新结合一抗和二抗的,首先把这张膜用TTBS洗,洗膜建议8分钟5次。然后结合一抗、洗膜、结合二抗、洗膜、发光鉴定。
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那么膜与发光液的接触时间长短会对实验有影响吗?

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肯定有影响啊,发光液滴在膜上,要和结合了蛋白的抗体发生反应,促使原子中的电子越迁(这个是高中物理知识,也是光产生的原理),产生光波,只是WB中使用的是生物化学发光而已(主要是结合了辣根过氧化物抗体与发光液的氧化还原反应)。所以要让他们充分反应,才能使氧化还原反应更完全,发光最亮。当然有时肉眼看不到有荧光,但也能显影,这主要是反应中的不可见光引起的。
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Ao7[使用道具]
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测beta-actin时,最后得到的胶片为什么什么都看不到呢,是什么原因呢?在我做的上一天一个师兄也是得出同样的结果。

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1.首先确定beta-actin和二抗是否过期,没过期的话beta-actin和二抗可以重新配制。
2.要注意二抗和beta-actin是否配套,如果beta-actin是鼠抗,二抗要用抗鼠的。
3.看二抗是碱性磷酸酶标记(AP)的还是辣根过氧化物标记(HRP)的,如果是AP标记的是不能用ECL发光法测的。
4.可能是蛋白上样量少了(这个可能性不大)。
5.一抗、二抗孵育时间不够。(一般一抗要37度2个小时,或4度过夜。二抗要37度2个小时)
6.还有就是转膜的时候蛋白根本没有转上去(湿转转膜时间视目的蛋白大小而定,时间长了没关系,但不要短,有些人说转膜会转过了,但在我做实验过程中没发现会转过的情况,建议200mA 2个小时,这个条件90kd以下的基本上都能转上去)。
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