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标题:【讨论帖】成功过的战友讨论下,你曾经WESTERN...

summerxx[使用道具]
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请问我做的是蛋白差异表达,但是现在做出来的结果是感觉不同组织的差异不是很大,可能是目的蛋白都显得深了,请问能有什么方法使目的蛋白显出来但又不是很深?
我自己想,一抗二抗的浓度和时间有没有关系?还是一抗的关系不大,而二抗的关系大?曝光的时间应该有关系,还有就是是不是加样量大一点差异会明显一点?
请问有没有高手能做较为系统的阐述?谢谢!

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1。蛋白上样量是多少,一般情况下,20-30ug总蛋白已足够了。
2。曝光/显影过深会掩盖掉蛋白浓度的差异,提高一抗或二抗的稀释度可以解决这个问题。
3。至于曝光时间,用Amersham ECL底物检测,如果曝光时间少于几十秒就可以显示出明显条带的话,说明蛋白量或一二抗过饱和了,可以减少用量。
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summerxx[使用道具]
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我的蛋白是多肽,只有40个氨基酸,分子量也就大概几个kd,
请教各位,象这种蛋白在做western时该注意什么?转膜用半干还是湿转好呢?

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1。高浓度PAGE胶(15-20%)。
2。0.22um转印膜。(一般使用的是0.45um)
3。转移buffer中甲醇含量不要太低(15-20%)。
4。凝胶在转移buffer中平衡时间不要超过10min。
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summerxx[使用道具]
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我们WB做过很多次,一直以来条件都很稳定,可现在不知道是天气变冷了还是怎么了,在ECL显影时,最初两三分钟条带还能肉眼看到,但很快就消失了,X光片显影也没有,请问各位高手这是什么原因呢?我们根据说明书得解释,尝试改变二抗的浓度,已经不同浓度都试过了,还是老样子,请问各位高手,指点一下???谢谢啦

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会不会是显影液温度太低?洗照片时显影液温度是挺关键的因素,洗胶片可能也是如此,我们实验室有空调,没遇到过这种情况。
条带肉眼可见,反应太强烈了,容易淬灭。
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fox_79[使用道具]
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成败的经验俺也有不少,样品制备、电泳转膜上抗发光前面各位都说了很多,俺就拿显影后的条带异常来说:
1 背景深,可以看到泳道 多数的可能是上样品太大或者抗体用量过多导致,按照一般的推荐,总蛋白量控制在50-100ug左右,抗体稀释度(尤其是一抗)需要做一个优化

2 条带拖尾,最大的可能是样品溶解不佳,要根据样品选择合适配方的裂解液保证样品充分裂解,上样前离心去除不溶物,曾经在样品上面载过大跟头

3 条带模糊,这个最复杂,可能原因是多方面的,包括胶本身的原因,缓冲液的原因SDS质量原因等,但我遇到过的是还原剂β-ME的原因:由于loading buffer存放时间过长β-ME挥发浓度降低,不能把二硫键完全打开,导致条带模糊,后来把β-ME现用现加,条带就好了

4 传说中的微笑现象,就是边缘的条带位置高中间低的现象,我在夏天温度高时遇到过,查过一些资料,说是因为散热不均造成的迁移率不一致,电泳的时候电压不要过高或者直接把电泳槽放在在盛有冰水的盆里就能解决
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我觉得做western 应该注意以下问题
1、 首先保证目的蛋白的表达,蛋白样品处理、跑胶,每个实验室都有一套经验,应该没有问题
2、关键的是转膜,电流、时间要根据自己实验室的转膜设备和以前做过的经验自己找合适的条件
3、再就是一抗、二抗的问题了,一定要保证肯定他的来源和质量
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zhenxin[使用道具]
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大家好,我现在做的目的蛋白是280kd的,组织,用的ripa裂解液,裂解的时候只加了PMSF,结果染了PAGE胶后连阳性对照也没有条带,是因为蛋白酶抑制剂不够吗?
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flower-201[使用道具]
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根据你所说的应该考虑蛋白降解,首先注意取组织的过程、组织提蛋白的过程,还可以加COCKTAIL试试。
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zhenxin[使用道具]
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谢谢楼上的!!

我从刚托臼处死的大鼠取出脑组织后,放入-80,10分钟后取出在匀浆,可以吗?

另外,一般匀浆的时间多长?如何看出匀浆好了?
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nut6694[使用道具]
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大家可以多讨论讨论磷酸化蛋白的WB方法
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kuohao17[使用道具]
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偶有个问题,至今一直不明白。
用天根的marker,在小梳子制孔时跑的还可以,
但在大梳子时就只能跑出一半的宽度,就是只有加样孔的一半宽,而且跑很难看,这是为什么?
用其他marker从未出现过这种情况。
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