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标题:【讨论帖】于蛋白电泳问题总结

PCR[使用道具]
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发表于 2013-11-16 11:31 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大

我们加入甲醇－乙酸脱色液后，将其直接放到微波炉里加热一分钟，然后放几张干净的tissue进去，能吸去很都染料，加快脱色，效果不错
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fqswdzd[使用道具]
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发表于 2013-11-16 11:31 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大


QUOTE:
原帖由 PCR 于 2013-11-16 11:31 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

我们加入甲醇－乙酸脱色液后，将其直接放到微波炉里加热一分钟，然后放几张干净的tissue进去，能吸去很都染料，加快脱色，效果不错

tissue的毛毛会不会粘在胶上影响做质谱啊？
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jrwyyplt[使用道具]
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发表于 2013-11-16 11:31 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大

把它叠成条状，沾在脱色皿边上就OK啦!(不要和胶混在一起）
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tuuu2[使用道具]
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发表于 2013-11-16 11:32 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大

就算和胶混在一起也没关系的，我做过，用的经典的老方法，脱色的时候，放入几张纸，脱色加快了。
最近从同学那学到一种新的，至少对我而言是的，脱色液用的是0.5％mol/l的氯化钠，不但没有了刺鼻的怪味，脱色效果也不错。
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utt0989[使用道具]
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发表于 2013-11-16 11:33 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大

用蒸馏水洗胶，并放在微波炉里加热，我们一直都在用，
效果很好。
只是要掌握好时间，时间太长而蛋白的含量又比较低的话，容易脱过了！
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ritou1985[使用道具]
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发表于 2013-11-16 11:33 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大

"脱色液用的是0.5％mol/l的氯化钠"

What does that mean? How to make it? Thanks!
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发表于 2013-11-16 11:33 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大

对于蛋白质SDS电泳脱色，蛋白质性质有关，对于R-250着色强的蛋白质，采用经典方法、或加热方法都可以，如果着色差，都不好。
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yapuyapu[使用道具]
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发表于 2013-11-16 11:34 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大
脱色液用NaCL可以,效果不是很好,感觉胶胀的厉害!
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fqswdzd[使用道具]
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发表于 2013-11-16 11:34 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大

我今天试试用水的方法，用经典的方法我得脱色过夜才行。
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fqswdzd[使用道具]
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发表于 2013-11-16 11:34 资料 个人空间 短消息  加为好友 

 小中大
试了，效果不错 ，大约十分钟左右脱好的。
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