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标题:【求助】GST融合蛋白 纯化时含杂蛋白太多

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【求助】GST融合蛋白 纯化时含杂蛋白太多

表达的GST融合蛋白大小大约46KD左右,用GSH洗脱时,洗脱液含有较多的杂带,请问大家有什么办法能减少杂带的量。
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我用的binding buffer为50mM PB,100mM NaCl,10mM DTT,2mM EDTA PH6.8。之前实验用过PBS,但在洗脱液中杂带也是一样,很多。请大家帮忙!!
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qhyu[使用道具]
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下面一段文字转自某人的一篇文章“常见重组蛋白的纯化”,你看看吧,应该收益匪浅。
杂带多:GST融合蛋白的表达系统很容易表达到GST部分就终止,所以26KD左右的杂带是很常见的,那可以选择用不同浓度的还原谷胱甘肽去做阶段洗脱,如果还是分不开,那也许就得选择离子交换或者凝胶过滤等别的分离手段。提高平衡缓冲液中的盐浓度可以降低因为离子作用带来的非特异吸附。在平衡缓冲液中添加0.5%吐温或Triton可以避免因为疏水相互作用导致非特异吸附,这些措施都可以电泳的杂带明显减少,但是如果用这样的方法还是杂带多,那就地回头去看看破碎的条件是不是太剧烈或者温度控制不好导致蛋白短裂或者分解导致一些蛋白片段带标签,或者因为样品长时间保存导致水解等,总之纯化的好坏决定于每一个步骤,不仅仅是纯化的问题。还有一个不容忽略的问题是有时候因为蛋白相互作用或者因为形成聚合体导致杂带增加,而由于疏水相互作用或者因为离子作用可以通过添加表面活性剂或者增加离子强度得到改善,对于因为形成聚合体的可以在缓冲液和样品中加1-2mM巯基乙醇避免。
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qhyu[使用道具]
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关于发电泳图,建议cuicui1005cn战友先将图片用软件如photoshop或ACDSee等转换为jpg的格式,裁剪一下,用附件形式直接显示,同时文件也很小。这样大家一眼就可以看到,不必下载了,有利于高手路过时帮你解决问题哦。
我把你的图变了一下,看看是不是方便许多?


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这次我在平衡缓冲液中添加了1%Triton,2mM PMSF ,并采用了不同浓度的还原谷胱甘肽去做阶段洗脱,发现在我的目的蛋白大部分在流穿和wash中,小部分用2mM的GSH就能洗脱下来了。请大家帮我分下下面这个图,谢谢!
lane 1,marker,
lane 2,3,4,5,6,7 : 是分别收集的10ml wash,
lane 8,9,10,11,12: 2mM GSH,4mM GSH,6mM GSH,8mM GSH,10mM GSH洗脱


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补充一下,胶上后面两道是与本实验无关的!!
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关于发电泳图,建议楼主先将图片用软件如photoshop或ACDSee等转换为jpg的格式,裁剪一下,用附件形式直接显示,同时文件也很小。这样大家一眼就可以看到,不必下载了,有利于高手路过时帮你解决问题哦。
我把你的图变了一下,看看是不是方便许多?

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其实哦这个图,洗脱组分,稍微稀释一下,纯度就会好看很多,象楼主那么大的上样量,就算是90%纯的蛋白样品跑出来也是有杂带的。
看楼主的杂带是大小分子量均匀分布,我感觉是纯化时残留的菌体的杂蛋白可能性比较大,不象是目的蛋白降解或者是目的蛋白中断表达的产物。
在清洗液(binding buffer)里加500mM NaCL和1% Triton-X100吧,多洗一些柱体积(15-20倍)
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这次我在平衡缓冲液中添加了1%Triton,2mM PMSF ,并采用了不同浓度的还原谷胱甘肽去做阶段洗脱,发现在我的目的蛋白大部分在流穿和wash中,小部分用2mM的GSH就能洗脱下来了。请大家帮我分下下面这个图,谢谢!
lane 1,marker,
lane 2,3,4,5,6,7 : 是分别收集的10ml wash,
lane 8,9,10,11,12: 2mM GSH,4mM GSH,6mM GSH,8mM GSH,10mM GSH洗脱

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这次的图和上次有很多不一样嘛
1,上次好象没有GST单体纯化出来,这次明显有,所以你的8号泳道是明显双带
很奇怪你上次的原始样品貌似也是有疑似GST单体带存在的,怎么就没纯化出来
2,洗脱梯度,应该从0.5mM开始
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有人做过GSH梯度洗脱吗?是否能起到除掉杂蛋白的作用?
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回复 #5 3N4G 的帖子

你好,请问一下,这个梯度洗脱还需要在层析柜里进行旋转10min什么的吗?还是像镍柱一样直接就如洗脱液后直接流出就可以了啊?
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