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标题:【讨论帖】细胞蛋白电泳奇怪图形

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【讨论帖】细胞蛋白电泳奇怪图形


我刚做WB,现在先只做到电泳,然后考马斯亮蓝染色。请问大家跑全蛋白的话假如做的好的话应该是什么样子呢?我用的是10%的胶,蛋白浓度1.1mg/ml,每孔上了15微升的样,跑出来的蛋白几乎全集中在60——110KD之间,也分不出条带,只是一团,其他位置就没有多少蛋白了,这是怎么回事呢?
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下图为原图,10%分离胶,左边两道是marker:分别为116,66.2,45,35,25,18.4,14.4
后面六道是提取的全蛋白,2乘的上样缓,每孔共上15ul,蛋白浓度1.1mg/ml。
最后两道是蛋白样品不够了,放在四度冰箱里很久的BSA,居然跑出了条带!


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蛋白样品是如何处理的?估计和你的样品有关!
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蛋白样品是如何处理的?估计和你的样品有关!
样品是购买的碧云天的成品裂解液,主要成分为20mM Tris(pH 7.5),150mM NaCl,1% Triton X-100,以及sodium pyrophosphate, β-glycerophosphate,EDTA,Na3VO4,leupeptin 。50ml的培养瓶加了300微升裂解液,冰上裂解30分钟。然后-80度保存。电泳前加入上样缓冲液后100度煮5分钟。
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glass[使用道具]
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上样前离心了么?
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回复 #5 glass 的帖子

上样前没有离,但是提蛋白的时候离过了12000g 10分钟
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guagua[使用道具]
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我是一个人做WB的,没怎么看过别人做,都是从书上和园子里看来的方法。跑的好的全蛋白应该是什么样子的呢?
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1.是样品裂解后,离心12000g 10分钟取上清 ,然后冻存的么?如果是的话,应该可以,离心已经去掉细胞碎片等了。
2.你的样品上样时是否太粘了,如果太粘就不容易跑下去。适当稀释一下,再电泳看看。
3.按你的蛋白浓度,上样量不用这么大也可以,如果是1.0mm,10孔的小胶梳子 ,上10微升也不少了。
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是离心之后取上清又-20度冻存的,做的是5ml的小胶,十孔的梳子。
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上样缓冲液中是否有SDS,样品是否清亮?
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