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标题:【求助】疏水层析如何确定平衡和洗脱缓冲液?

wood533[使用道具]
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【求助】疏水层析如何确定平衡和洗脱缓冲液?


我现在用的是AKTA purifier ,跑的是Phenyl-Sepharose,我将第一步离子交换得到的目的蛋白峰溶液的盐浓度增加至4mol/L NaCl (例如:第一步我是用0.3mol/L NaCl 的10mmol/L磷酸钠缓冲液 (pH7.4)洗脱出目的蛋白峰,我取10ml此蛋白峰溶液加入2.16 g(4-0.3)×0.01×58.44=2.16) NaCl使其盐浓度增加至4mol/L NaCl ),文献上只说是用2mol/L NaCl 的10mmol/L磷酸钠缓冲液 (pH7.4)洗脱,那么我用什么来平衡柱子和洗脱不结合蛋白呢?
我原来的设置是:A溶液:pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液 B溶液:2 mol/L NaCl的pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液
流速 1.00 ml/min 上样 2ml (样品为第一步的目的蛋白峰,使其盐浓度增加至4 mol/L NaCl )
用A平衡5.00倍柱体积 ,上样后用A 洗脱不结合蛋白,洗到基线水平后,用 B溶液 洗脱目的蛋白
我感觉我用错缓冲液了, 我的A液是不是应该是4mol/L NaCl的pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液吧?? 用它来平衡柱子、上样、洗到基线水平,最后洗脱目的蛋白时用2mol/L NaCl的pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液啊!
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请各位高手帮看看,我不敢确定是不是那么做,我就可以在用2天蛋白纯化仪,下次再用就要7月中旬了,时间宝贵啊!! 请大家帮帮忙,万分感激!
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疏水层析是高盐上样,低盐洗脱,这么看来你的A应该是4mol/L NaCl的pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液
其实你有最好的层析设备AKTA purifier ,你完全可以这么操作(看样子你使用的应该是1ml kit预装柱):
A溶液:4mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液
B溶液:pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液
然后在AKTA purifier编辑方法,流速流速 1.00 ml/min 上样 2ml ,用然后2CV的A洗脱未结合的蛋白,在20CV(也即是20个柱体积)内线性梯度洗脱,浓度是从0%B变化到100%,然后收集每一管,包括流穿,测定你的目的蛋白在哪一管中,然后从AKTA purifier 的曲线图上,看看你目的蛋白洗脱时的B的浓度(例如50%,也就是2mol/L NaCl ,如果是70%B那就是1.2mol/L NaCl ),就可以确定大概在那个浓度下你的目的蛋白可以被洗脱
然后编辑方法,用A上样,同样流速同样上样体积,进行梯度洗脱,这个梯度就是你前面摸索到的浓度,如果试验结果你还感觉不满意,那么这个浓度左右进行微调就可以了。
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太好了,我还一直不太敢确定我的A液呢,做了好多次了,直到前天我才觉得我的A液用的不对,你这么一说我就放心了。
我是自己装的柱子25ml,昨天白天我跑了一次线性但是很奇怪,竟然没有峰;晚上又跑了个梯度也是没有峰,很是奇怪。
A溶液:pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液
B溶液:4mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液
线性方法编辑:流速流速 1.50 ml/min ,Start-ConcB(%B)我设的是100,那么就是说先用100%B液3CV平衡,上样 2ml, 用然后2CV的100%B洗脱未结合的蛋白,在15CV内线性梯度洗脱,浓度是从100%B变化到0%,结果什么也没有。(图在附件里)
阶段梯度编辑方法:流速流速 1.00 ml/min ,A、B溶液同上,Start-ConcB(%B)仍为100先用100%B液3CV平衡,上样 2ml, 用然后2CV的A洗脱未结合的蛋白,设置了5个阶段梯度洗脱(盐浓度是从4到0mol/LNaCl),每个阶段洗脱用4CV,结果仍是什么也没有。
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图中的那个峰有你的目的蛋白吗?
有几种可能性:
1.目的蛋白没有被洗脱下来,就是你的蛋白和介质的结合力太强了,你可以尝试用水或者pH9.0的缓冲液洗脱一下,看看是否有蛋白被洗脱。如果有目的蛋白被洗脱,你可以降低你上样的盐浓度
2。确定一下你图中那个尖峰什么?有你的目的蛋白吗?


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太好了,我还一直不太敢确定我的A液呢,做了好多次了,直到前天我才觉得我的A液用的不对,你这么一说我就放心了。
我是自己装的柱子25ml,昨天白天我跑了一次线性但是很奇怪,竟然没有峰;晚上又跑了个梯度也是没有峰,很是奇怪。
A溶液:pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液
B溶液:4mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液
线性方法编辑:流速流速 1.50 ml/min ,Start-ConcB(%B)我设的是100,那么就是说先用100%B液3CV平衡,上样 2ml, 用然后2CV的100%B洗脱未结合的蛋白,在15CV内线性梯度洗脱,浓度是从100%B变化到0%,结果什么也没有。(图在附件里)
阶段梯度编辑方法:流速流速 1.00 ml/min ,A、B溶液同上,Start-ConcB(%B)仍为100先用100%B液3CV平衡,上样 2ml, 用然后2CV的A洗脱未结合的蛋白,设置了5个阶段梯度洗脱(盐浓度是从4到0mol/LNaCl),每个阶段洗脱用4CV,结果仍是什么也没有。
......


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2014-4-21 17:24
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那个尖峰(上样时洗脱不结合蛋白的峰),还没有进行正式的洗脱呢。
你的建议我明白了,1是结合太牢了洗不下来了,2是没有结合上去,是这样理解吧!
我也跑了一次直接就用2mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液洗脱的,
先用4mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液平衡3CV后,上样,再用4mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液洗3CV到基线水平,最后用2mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液洗脱5CV,结果出峰。图在附件里
我现在很是疑惑,为什么线性和阶段梯度都不出来,而直接用2mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液洗脱却出了呢??
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图中可见换2mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液洗脱5CV时候电导突然降特别低,所以出峰了,怀疑换缓冲液时没用2mol/L NaCl pH 7.4 0.01 mol/L磷酸钠缓冲液洗脱5CV把管道中的水洗干净,所以导致洗出来了.此外需要对各峰进行电泳检测,否则很难知道是什么东西,同时这样也更好摸索条件,否则只看峰是没用的,有的时候活性最高的地方检测器显示不一定是峰,所以活性检测也很重要.没检测手段配合很难做好纯化.
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我把我的蛋白纯化图都看了一遍,确实每一个出峰的地方都是电导下降的特快,要不我阶段梯度和线性都洗脱不出来峰呢。那这样的问题怎么解决呢,每次清洗完管道后留在管道里的都是纯净水啊?
是不是可以在没有挂柱子的时候先分别拿缓冲液洗管道,这样的话管道内就会充满溶液了。
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hold住[使用道具]
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对,换什么溶液用什么溶液清洗管道和泵,机器本身就可以设定,连着柱子也没关系,清洗泵和管道的时候是不会过柱子的,所以不需要不接柱子,否则挂上的蛋白在你换溶液就被冲下来了.你问问管机器或者用这机器比较熟悉的人,这样会更好点.
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通过你的纯化图谱可以看出:你在梯度洗脱的时候,肯定没有将A、B泵事先平衡好,才出现了电导突然降到很低。一般这种阶梯洗脱的时候,需要先用你所想要的盐浓度,设定好B泵(高盐)的百分比,然后走旁路(即不经过层析柱),然后让缓冲液的电导平衡到相对应的盐浓度后,才切换管道进柱,这样就不会出现在洗脱过程当中,出现电导变化如此大的情况。你的那个蛋白洗脱峰有可能就是因为电导的急剧下降导致的。
另外在看一下你加入那么高的盐,上柱前目的蛋白确定还存在吗?有没有可能导致部分沉淀,蛋白量减少,因此你在线性洗脱的时候,蛋白没办法富集,全程都有(蛋白状态不是很均一的时候),但量都特少,导致洗脱峰不明显或电泳没有目的蛋白。
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