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标题:【求助】第一次跑的Ag染

junhun[使用道具]
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【求助】第一次跑的Ag染


第一次跑的Ag染,条件:Clean-Up后上样量220ug,17cm pH3-10胶条
IEF条件:主动水化50V 15h;S1,250V线性30min;S2,1000V快速1h;S3,10000V线性5h;S4,10000V快速40000V.H;S5,500V保持.
SDS-PAGE:加低熔点Agarose时溶化不充分,导致IPG胶条上方的Agarose凝固后带了若干个气泡(IPG胶条与SDS-PAGE的gel接触紧密,无气泡).
Q:为什么我的Ag中间区域这么beatiful,而酸性端与碱性端有这么多的横纹?
求高手指点一二.


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2014-6-8 11:24
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avi317[使用道具]
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1.聚焦时间不够引起的,因为你17cm胶条10000v只聚焦到40000vhs,显然不够,应该在80000vhs左右。
2.可以在1000v-10000v之间再加两个梯度,这样效果会好些,
3.根据你的样品定量确定上样量,一般银染130ug左右,从图上看上样量还可以。
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junhun[使用道具]
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谢谢楼上的朋友
1.对于聚焦时间,我做实验前,打电话向Bio-Rad公司的负责蛋白质组学市场的技术员咨询了一下,我本来聚焦时间是通用的推荐的60000Vhs,但他说这个很容易造成DTT的消耗,他说40000Vhs就够了,就改用了40000Vhs了;做完最后染色后,我专门叫他过来看了一下gel和扫描后的imagel,他的建议是把聚焦电压从10000V改为8000V,仍然40000Vhs.
2.1000V-10000V之间的梯度如何设置?slow,linear or rapid ?
3.Ag染时专门请了2-DE高手来监督,她说这个显色时,点出现的太快了,估计是量真的太多了(本来是想使用Blue Silver G-250 CBB染的)
不知道各位2-DE师兄师傅还有什么建议吗?
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avi317[使用道具]
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1. 8000v和10000v差别不大,主要是聚焦程度,40000vhs可能对一些样品来说足够了,但对你的样品不够,一般聚焦不能低于60000vhs。DTT的还原效果较强,基本上你混合进去没多长时间就还原结束了,无所谓消耗。
2.可以加2000v,linear;5000v,rapid;
3.点出的快慢和上样量关系不大,正常情况银染是所有点一起显现;上样量过大的话,显色会出现一团一团的,轮廓模糊,而且会影响低丰度蛋白的分离,从你的胶上看,上样量影响不是很大,这和你的蛋白浓度有关。
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3X a lot!
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QUOTE:
原帖由 junhun 于 2014-6-8 11:24 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

第一次跑的Ag染,条件:Clean-Up后上样量220ug,17cm pH3-10胶条
IEF条件:主动水化50V 15h;S1,250V线性30min;S2,1000V快速1h;S3,10000V线性5h;S4,10000V快速40000V.H;S5,500V保持.
SDS-PAGE:加低熔点Agarose时溶化不充 ...

你好:
我想问下银染你是用什么容器染的阿,大胶没有合适的使用与做银染的容器阿
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junhun[使用道具]
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我们用从隔壁实验室借来的定做的玻璃缸.我们实验室起步不久,容器染缸已经订做了一批,是23.2cm*23.2cm*5cm的有机玻璃,80元/只,下周四就可以到了.请问,有机玻璃和一般玻璃都适用于Ag染吗?
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我们用从隔壁实验室借来的定做的玻璃缸.我们实验室起步不久,容器染缸已经订做了一批,是23.2cm*23.2cm*5cm的有机玻璃,80元/只,下周四就可以到了.请问,有机玻璃和一般玻璃都适用于Ag染吗?
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我们染色是在超市买的抽屉式的文件柜,很好用。
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junhun[使用道具]
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但是文件柜在加工的时候好象都有一个圆盘状的突出呀,会不会在摇床上时会不会把胶给弄破烂呢?
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