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标题:【求助】200kD左右的蛋白Western遇见问题,请求帮忙

changlhsyo[使用道具]
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【求助】200kD左右的蛋白Western遇见问题,请求帮忙


我的目的蛋白大概是200kD左右,样品是细胞裂解液(常规配方,4度半小时)然后 160v跑3小时左右,转移是200ma转3个小时,后面是标准步骤,一抗是买的R&D公司的抗体,应该不会有问题,二抗、ECL、显影别人都用过,应该不会有问题,就是跑不出来,希望大家帮我找找原因,谢谢。
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wmp1234[使用道具]
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不明白你说的20W是什么意思,蛋白的分子量一般用KDa的。
跑完电泳,用考马斯亮蓝染胶,看是否能见到目的带
如果没有,可能是你的细胞中该蛋白表达低,加大上样量。
转膜一般不会有太大问题。
一抗的稀释度改变一下,抗体浓度太稀可能会检测不到目的带。
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changlhsyo[使用道具]
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20w就是200KD左右啊,别人用相同的细胞和抗体都跑出来过的,我的细胞裂解液也跑了电泳染色是有条带的,说明裂解的问题不大。
我担心的是:电泳是160v跑了三个小时,会不会对蛋白有影响?
转移我是200mA转了3个小时,虽然mark转上去了,但是我的蛋白能不能保证转上去?
还有我的电泳用的是6%的胶,是不是还要稀一点?
谢谢
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wmp1234[使用道具]
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这个问题很可能是电转效率过低引起的。
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tangxin_80[使用道具]
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你的分子量这么大,不应该这么转的,最好是低电流转过夜(12个小时以上!),6%的胶够稀的了,不需要再稀了,否则还不一碰就碎了?
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changlhsyo[使用道具]
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那低电流低到什么程度啊?100mA,还是更低?(还有一个疑问,大家说可能转移效率,但是彩色Mark上面的大分子量mark都转上去了啊,怎么解释啊?)
上面有点错误,我跑的是8%的胶,要不要试试6%的啊?
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tangxin_80[使用道具]
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用30mA,转16小时以上,用8%的胶也可以。
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remenb[使用道具]
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8%的胶可以,200mA转三个小时,我认为也可以,不过我认为你电泳时间过长,而且160v的电压,太大了吧,我们一般是70v,marker分开后加到100v.我的经验是,一般2个半小时足够了(8%的胶}。
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changlhsyo[使用道具]
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先谢谢大家,问了一下科室的老师他推荐200mA转5-6个小时(4度),不知道和30ma转16个小时哪个更好点?
还有100v两个小时,好像200Kd的蛋白下不来吧?
还有我们的转移缓冲液就是把电泳缓冲液稀释大概倍后加入20%的甲醇,不知道这样简单的做法是不是可以?
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