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标题:【求助】关于用Bradford法测定蛋白质含量测定时出现的问题

04906[使用道具]
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【求助】关于用Bradford法测定蛋白质含量测定时出现的问题


我用Bradford法测定蛋白质的含量,在做标准曲线时出现了很大的问题,请各位高手帮忙分析分析。
试验如下:
试剂:
(1)标准牛血清蛋白质溶液(100ug/ml):称取牛血清蛋白(BSA),配制成0.1mg/ml的标准蛋白质溶液。
(2)考马斯亮兰G—250溶液:称100mg考马斯亮兰G—250,溶于50ml
95%的乙醇后,再加入100ml 85%(W/V)的磷酸,用蒸馏水稀释至1升。
实验步骤:
  取6支试管,各试管分别加入:0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml标准牛血清蛋白质溶液(100ug/ml),用蒸馏水补足到1.0ml,最后各试管中分别加入5.0ml考马斯亮兰G—250试剂,摇匀,并放置5分钟左右,在595nm波长下测定吸收度,以蛋白质浓度为横坐标,以吸收度为纵坐标绘制标准曲线。
问题:
  吸收值太小,最大不到0.2,且很不稳定,不成线性关系,随蛋白质浓度的变化,吸收值不呈现明显的变化。
  对照品是新买的,考马斯亮兰G—250溶液也重复配制验证过,现在找不出什么原因,请各位高手赶紧帮忙分析分析,很急啊,不胜感谢!!
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xyw5[使用道具]
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何必这么麻烦呢?BioRad有现成的试剂做蛋白定量,就是Bradford法,效果很好。
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caihong[使用道具]
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你出现的问题是因为你配制的蛋白浓度太低了。一般我们配制标准蛋白液是1mg/ml,你的浓度低了十倍,而且我们使用的考马斯兰的溶液只用3ml,而你居然用了5ml,不知道你的比色皿是怎么能装的下这么多的液体?
而且你用于补齐的三蒸水太多了,把你的考马斯亮兰液都稀释了。
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04906[使用道具]
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对比色皿的要求很高??用石英的影响很大??
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你的考马斯亮兰过滤了吗,蛋白低不是问题,你做的平行性好就可以了,看你曲线都做不好,那么你应该想想你标准样品加样,混匀过程有没有错
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66小飞侠[使用道具]
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我有两个建议:将BSA母液浓度设定在1mg/ml,
做七个浓度梯度, BSA浓度分别为0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1mg/ml, 用0.9%NaCl 补至100ul,染料还是加5ml
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66小飞侠[使用道具]
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标准品母液浓度配置成1mg/mL做标准曲线,另外如果有酶标仪的话可以应用酶标板来做,加入比例按常规的比例加就可以了(如5ul:250ul),效果不错,也比较方便。
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lixi559[使用道具]
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我觉得是你在实验过程中的操作造成的,你的BSA浓度折算后不低,而相对的0.8和1.0好像还高了,你的图是不是有点指数图的样子啊?可以试试采用非线性或指数回归法得方程,不用线性回归。
因为Bradford法测量基础是化学反应,必须在实践上把握好,加上考....g250后必须快速测量。还有建议有条件就买试剂盒来测,会准确很多,而且也不太贵。
分光光度计测量师误差太大。
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04906[使用道具]
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我想问问,按照我现在的浓度范围,五个点的吸收度大概应该是多少,比如1.0的。
还有,我把母液配成1.0mg/ml的了,
但是,这回吸收度除了第一个点0.3,都变成1.0以上了,分别为1.1844、1.3541、1.3922、1.4938。
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