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标题:【求助】蛋白纯化遇到的问题

jrwyyplt[使用道具]
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【求助】蛋白纯化遇到的问题


我用Ni柱纯化一个大约28kd的蛋白,过完柱子跑电泳发现第一次(20M的咪唑)就把目的蛋白洗下来了,目的蛋白没有挂到柱子上,不知道是什么原因,恳请那位高手给予指点,谢谢!
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guagua[使用道具]
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你给的信息太简单,请将你的流动相条件,样品,色谱柱规格,流速等色谱条件给出。
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jrwyyplt[使用道具]
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我用的是一个His-tag纯化试剂盒,我的蛋白是用原核表达载体PET-24d在BL21中表达的蛋白,大约800bp,是表达菌株25度诱导表达6h,收集菌体,加入Bind Buffer后超生波破碎后 离心得到的上清液,过完柱子后,发现蛋白没有挂到柱子上,能给分析一下原因么?
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fei1226com[使用道具]
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binding buffer具体采用的是什么呀?
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jrwyyplt[使用道具]
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NaCl ,磷酸氢二钠,磷酸二氢钠,10mmol的咪唑
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你的蛋白用镍柱纯化合不合适?有文献报道过吗?是带有His-tag的吗?并不是所有的蛋白都可以用某种方法纯化的
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glass[使用道具]
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介质是不是不行了
你的柱子是否有充分再生
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ritou1985[使用道具]
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如果His标签没有完全暴露的话是有可能发生这种问题的,你可以在超声破随后的上清夜中加入一定量的尿素,至终浓度为6~8mol/L,这样可以使his标签充分暴露,有利于蛋白结合。
另外,可以尝试一下Cu2+柱
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换配基密度更大或者手臂更长的填料,此外提高上柱的pH,降低流速,这样应该可以改善,也可以在20mM以下做阶段洗脱,能分开就可以,因为我见过1,2,,3,4,5,6mM阶段洗脱的,优化一下吧.
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Liuzihaogfbdvs[使用道具]
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【求助】His标签纯化蛋白不挂柱

我用pET-28a载体表达了一个蛋白,WB一抗用His-tig单抗能检出目的条带,而且是部分可溶性蛋白,但是用Ni柱纯化却几乎没纯化出蛋白。
纯化步骤:先后用超纯水和Binding buffer冲洗柱子,再将破碎上清和填料混合,在4℃振荡结合过夜,第二天把破碎上清和填料混合物装回柱子,收集流穿液。先用Binding buffer冲洗,再用Elution buffer 1mL洗脱蛋白,分别洗10次。(Binding buffer:20mM Tris-HCl,10mM咪唑,0.5M NaCl;Elution buffer:20mM Tris-HCl,500mM咪唑,0.5mM NaCl)
用SDS-page检测,发现纯化出来的蛋白条带很细,有很多杂带,并且流穿样的目的条带和上柱前的破碎上清目的条带没什么差别。
烦请各位大佬帮忙看看是怎么回事,该怎么样改进,谢谢!
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