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标题:【求助】显影结果老是不好

kswl870[使用道具]
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1
 

【求助】显影结果老是不好


我做了2个月的western了,显影的结果老是不好,我都急死了!在PVDF膜上涂了发光剂后,总能显出很多条带(就像丽春红染色的那种),而这两天做的都呈大片状和团状的荧光(而丽春红染色条带却很清晰),显完影后胶片上的条带自然不好看。他们说可能是没封闭好,我是用脱脂奶粉封闭的,而且是在4度中过夜封闭,我觉得应该不是封闭的问题。我洗抗体应该也洗得很干净,洗一抗我洗60分钟共4次,二抗洗120分钟共8次。我真的很困惑!我用的是0.45um的PVDF膜,我检测的蛋白是动物组织中提取的蛋白。请教各位大虾,我的问题出在哪里?
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BOSS2011[使用道具]
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2
 

脱脂奶粉浓度是多少。用10%可能会好一些。
一抗和二抗是多抗吗?看园子里的帖子说增加抗体稀释度也能降低背景。
一抗和二抗孵育时是不是没混匀啊?
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987789[使用道具]
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3
 

1.PVDF瞙在转瞙前要用甲醇处理,不知道你注意这点没有。
2.还有要看你的抗体是什么来源了,自制还是商品化的,国产还是进口,最好一抗选用进口的,大公司比较好,比如santa cruz,labvision等。
3.应该不是封闭的问题,封闭没有什么技术可言,就是5%脱脂奶粉的TBST溶液。
4.自制抗体如果动物选择不好,可能会有多条带,我遇到过这种情况。
5.显影液不要涂在瞙上,涂可能会不均匀。最好是完全覆盖瞙,孵育时候轻轻晃动。
6.还有抗体的浓度问题,你做一抗和二抗稀释梯度看看,可以先降低二抗试试。
7.还有就是 你的胶片一定不能沾水,接触胶片的手套一定要干净。
8.发光剂要彻底晾干。不干也会有背景。
总之 可能最大的还是抗体浓度问题。
WB环节多,任何一个环节不注意或者操作马虎点都会影响结果。
3 个月不算久
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kswl870[使用道具]
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谢谢你的回复!
我用的是5%的脱脂奶粉;一抗和二抗都是多抗;一抗和二抗孵育时混匀了。我在园子里搜了一下,好像没看到有和我类似情况的。我再用10%的脱脂奶粉试试。
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5
 
Western 是一很奇怪的实验,我也遇到过,一段时间内总是花花的 影子。我做的时间挺久,曾经一段时间安把所有试剂重新配。
1.我的建议是你还可以试试 做内参的 western ,验证你的操作。 我感觉
Labvision(NMK)的β-Actin还是不错的。这样可以大概明确是不是一抗的问题。
2.发光剂我用的是PIERCE的 和Perkin Elma的。特点不大一样,前者在说明书中说的敏感度很高,其实不然,我感觉敏感度还不如PE的,PE敏感度高,但是背景也会稍高,我通过减少2 抗的量来做,把背景降低到合适的强度。
3.转瞙后不要用丽春红染色,直接用TBST洗几遍 ,开始从封闭做起。
我感觉蛋白降解的可能不大,当然不同蛋白半衰期不同,一般几个月是没有问题的。我最近做了今年一月收的蛋白,一直放在-20度,效果也还不错。
4.我是把发光剂充分预混后滴到 parafilm 瞙上(封瓶子的封口胶),然后把 瞙反扣过来。反应时间根据说明书。
5.我加一抗是把稀释液滴在NC瞙上,NC瞙放在parafilm瞙上,而不是用袋子封口(以前这么做),放到湿盒里。室温摇或者4 度过夜,抗体稀释液在加前摇震荡混匀,加到瞙上后(如果是4度过夜)要先摇匀。
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woshiduiyan[使用道具]
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6
 

我认为你的实验的主要问题是一抗、二抗浓度过高的原因造成的。一抗过高,容易造成非特异性条带过多,出现如你所述的“在PVDF膜上涂了发光剂后,总能显出很多条带”的情况的。
二抗浓度过高,可以造成如你所述的“呈大片状和团状的荧光”。
另外,ECL的A和B液的混合液可以用加样器直接滴加在PVDF膜上,只要你记住孵育过后,尽量弃掉过多的A+B液即可。
孵育一抗、二抗的时候是否用parafilm膜,我认为这是没有定论的。只看你自己的习惯了。
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用parafilm膜目的是 避免稀释液散开
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