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标题:【求助】为什么我15%的胶跑得这么恐怖啊?

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个人以为:
1. 上样量不大,30ug可以,但体积不要超过加样槽的容积。
2.电泳时恒流0.03A有点高,试试20mA吧。
3.注意降温,冷却。
4.用新的过硫酸铵。
5.所有用到的溶液要过滤。最好用高纯水。
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22
 
总结一下大家的回答,也是我的一点点看法:
1.制胶的问题:严格按照分子克隆上的配方配制浓缩及分离胶。在各组分的液体中,我感觉很重要的是TRIS-CL的配置,不同的浓度,不同的PH值,一定要正确。胶的浓度大些,跑的条带会 好看些,但电泳的时间及电转的时间都会增加。另外 在聚合时间上,一般现在的温度(20度),至少在30分钟以上。
2.上样量不算大,但体积不要太大。办法是:使用浓一些的样品,上样缓冲液可以配成5x的。这样条带会好看一些。
3.电泳时间不是很大问题。因为其取决于你的电压大小,一般均采用恒压,电压越大,产热会多,因此,最好在冰盒内电泳(如果由制冰机的话,不是问题。)但我的感觉是,电压不要太大,在80-100v,跑得时间长一些,结果会好看些。我曾经染过电泳后的胶,确实是这样。
另外,电泳缓冲液很重要,按分子克隆的配方配制,配成5x的储存液,每次使用时稀释到1x的工作液,工作液最多使用2次,也就是说,第一次是新鲜配的,用完后回收,再用一次就弃掉,不要反复用,因为其中的离子浓度已经今非昔比了。注意:配制液体时一般要配成储存液,这样存放时间较长也会比较稳定,而且经用,如果配成工作液,不能长时间存放,且一次配成用不了几次又需要配了,很麻烦。
综上,
1.请按照分子克隆检视自己所配的液体是否合适;--关键!
2.使胶聚合充分;
3.冰盒中电泳,电压、时间中庸一些,别片面追求时间短。
祝试验成功!
......

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pH值是对的,聚合时间积层胶和分离胶都分别达到1h以上。
5×上样缓冲液的SDS不会沉淀下来么?
用4×就已经很稠很费劲了啊
电泳是放4度的
而且电泳液原先有预冷
我们也是从5×电泳液稀释用的,最多使用2次
谢谢你的耐心解答,可是你分析的原因似乎都不是问题所在 Sad
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23
 
我怀疑胶和玻璃板之间有缝隙。我跑了两块10%的,其中一块,出现了异常。但也只是其中几个条带出现了快速下移。
请问:分离胶的灌胶之后,你用什么压的胶,如果是水的话,换成*醇试试(记不得了,查分子克隆)。我有一次用10%的SDS压的胶(应该是0.1%的SDS),结果胶聚合的不均匀。
另外,检查一下配胶时,SDS的用量和浓度是否正确。是否充分混匀,是否用错缓冲液,过硫酸铵和TEMED是否是最后加入的。用量是否不对(有人和我说过,分子克隆的这两个试剂有可能不对,我没有验证过)。玻璃板是否洗净。和周围跑过15%的人对比一下配胶和步骤。
从结果看,是蛋白泳动的不均匀。可能是胶的问题,也可能是胶底部微小的气泡造成。
我怀疑还是胶的聚合不均匀。可能是凝胶的时间不够,也可能是过硫酸铵和TEMED用量问题,或者未充分混匀。也可能是SDS的过量。4度电泳试试。恒压试试。
哦,对了,拔掉梳子后,有没有冲洗一下上样孔?
......

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如果板和胶之间有缝隙的话,电泳前是可以看到气泡状的东西的
跑的时候从溴酚蓝的形状也可以看得出来
以前跑10%胶的时候也有遇到这种情况
可是这两次都不是那样的
分离胶是用无水乙醇压的,我们实验室一直用这个,应该不存在什么问题吧?
倒掉乙醇后也有用双蒸水冲洗多次,然后吸干水分。
SDS的量在配制缓冲液时反复核对过,没有配错。缓冲液也没错,APS和TEMED肯定也是最后加呀,用量也是反复验证过的,因为跑的胶很难看,所以在配胶的时候特别小心
玻璃板洗得很干净,拔掉梳子后也有冲洗加样孔。
我让实验室其他跑15%胶的同学帮忙配了一板胶,结果跑得也非常难看。
而她跑她的样品跑出来却好看很多
所以我怀疑裂解细胞的buffer不同会不会导致跑胶效果的差异?
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0.03A恒流,溴酚蓝跑至底部时,20kd的那道marker还在胶的中间。
箭头标注的条带就是目的条带(17KD)。
在积层胶那部分跑起来还是很正常的,可是到了分离胶就不行了。
溴酚蓝变成很宽的弥散状,下缘是平的,可是上缘弯弯曲曲,丑得不行。
为什么跑出来会这样歪歪扭扭的呢?
是因为上样量太大?可是我以前跑10%的胶,60ug上样量都不会跑成这个样子啊。
已经排除了配胶试剂和电泳液电泳设备的问题。
请大家帮忙分析分析,拜谢~
不知道你配的30%丙烯酰氨的PH质调过了吗?你的电泳缓冲液重新配,并注意它的PH质
......

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这两个东西没问题
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个人以为:
1. 上样量不大,30ug可以,但体积不要超过加样槽的容积。
2.电泳时恒流0.03A有点高,试试20mA吧。
3.注意降温,冷却。
4.用新的过硫酸铵。
5.所有用到的溶液要过滤。最好用高纯水。
......

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上样的体积不足加样槽容积的1/2
第二次跑胶电流就是0.02A
是放4度电泳的
第二次用的是当天新配的APS
所有溶液过滤也夸张了点吧?
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buffer 的PH,样品的盐的含量(,细胞裂解液的成分)是否与核酸混在了一起.,都有可能,,在样品太多的时候这些东西影响特别大,,样品少他们的影响就小一点..我以前跑胶的时候(12%,,15)也出现过这样的问题
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这么歪歪斜斜的胶本人就跑过,后来找到原因 :5*电泳缓冲液是1年前配的,用新配的就解决了 你的电泳液看了没有?
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jujuba[使用道具]
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不知道你的问题解决了没?
你这个问题我也遇到过,
但是我找其他实验室的同学给跑的,
所以原因很复杂,
我个人认为有一下几个问题:
1、我觉得你应该摸索一下AP和TEMED的量,尽量少加。
或者试着换一下,如果加的太多了就会导致胶聚合的不均匀。
2、你可以试试晚上做胶第二天跑胶,这样估计胶肯定充分聚合了。
祝你好运!
问题解决了告诉大家一下。
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这么歪歪斜斜的胶本人就跑过,后来找到原因 :5*电泳缓冲液是1年前配的,用新配的就解决了 你的电泳液看了没有?

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因为跑胶跑得多
所以5*电泳液一般不到一个月就会新配一次
电泳液应该没问题
因为同时跑的10%胶跑得很漂亮
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JK.jon[使用道具]
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buffer 的PH,样品的盐的含量(,细胞裂解液的成分)是否与核酸混在了一起.,都有可能,,在样品太多的时候这些东西影响特别大,,样品少他们的影响就小一点..我以前跑胶的时候(12%,,15)也出现过这样的问题

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那你后来怎么解决的呢?
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