小中大我怀疑胶和玻璃板之间有缝隙。我跑了两块10%的,其中一块,出现了异常。但也只是其中几个条带出现了快速下移。
请问:分离胶的灌胶之后,你用什么压的胶,如果是水的话,换成*醇试试(记不得了,查分子克隆)。我有一次用10%的SDS压的胶(应该是0.1%的SDS),结果胶聚合的不均匀。
另外,检查一下配胶时,SDS的用量和浓度是否正确。是否充分混匀,是否用错缓冲液,过硫酸铵和TEMED是否是最后加入的。用量是否不对(有人和我说过,分子克隆的这两个试剂有可能不对,我没有验证过)。玻璃板是否洗净。和周围跑过15%的人对比一下配胶和步骤。
从结果看,是蛋白泳动的不均匀。可能是胶的问题,也可能是胶底部微小的气泡造成。
我怀疑还是胶的聚合不均匀。可能是凝胶的时间不够,也可能是过硫酸铵和TEMED用量问题,或者未充分混匀。也可能是SDS的过量。4度电泳试试。恒压试试。
哦,对了,拔掉梳子后,有没有冲洗一下上样孔?
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如果板和胶之间有缝隙的话,电泳前是可以看到气泡状的东西的
跑的时候从溴酚蓝的形状也可以看得出来
以前跑10%胶的时候也有遇到这种情况
可是这两次都不是那样的
分离胶是用无水乙醇压的,我们实验室一直用这个,应该不存在什么问题吧?
倒掉乙醇后也有用双蒸水冲洗多次,然后吸干水分。
SDS的量在配制缓冲液时反复核对过,没有配错。缓冲液也没错,APS和TEMED肯定也是最后加呀,用量也是反复验证过的,因为跑的胶很难看,所以在配胶的时候特别小心
玻璃板洗得很干净,拔掉梳子后也有冲洗加样孔。
我让实验室其他跑15%胶的同学帮忙配了一板胶,结果跑得也非常难看。
而她跑她的样品跑出来却好看很多
所以我怀疑裂解细胞的buffer不同会不会导致跑胶效果的差异?