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标题:【求助】过Glutation Sepharose 4B亲和层析住后怎么有这么多..

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【求助】过Glutation Sepharose 4B亲和层析住后怎么有这么多..


如图所示,我的目的蛋白偶联GST,然后过Glutation Sepharose 4B亲和层析住纯化,怎么会有这么多杂带呢?做多抗可以吗?


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jrwyyplt[使用道具]
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首先确定的是亲和的配基,如果能吸附的话,那么再确定解析条件!
你的蛋白和配基之间是共价吸附还是非共价吸附决定了解析的步骤,是增加盐浓度洗脱还是降低盐浓度洗脱,还是改变pH洗脱!
在确保目标蛋白被吸附的话,多改进解析条件吧!
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谢谢楼上的
我想请问是除了改变盐浓度外,是不是也可以改变还原型谷胱甘肽的浓度?
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可以先用低浓度GSH预洗,3-5mM,然后再用10-25mM GSH洗脱
不过看你的电泳图,26kd处有两个条带,很可能是GST的片断
你的目标蛋白是35kd的那个吗?是否需要做酶切还是纯化融合蛋白就可以了呢?
GST蛋白亲和层析的确容易产生杂带,而且如果发生表达终止,即产生GST片段的话就比较麻烦了
能否具体说说你的纯化条件呢
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我的纯化条件是用10mMGSH溶在50mMTris里洗脱目的蛋白的(就是35kd那个),我只需要纯化融合蛋白,让后做多抗用。
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kswl870[使用道具]
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如果你只要融合蛋白的话,从电泳图来看,这个纯度恐怕不行
26kd的是GST片断,同样亲和在凝胶上,比较麻烦
或者再多制备一些,然后用离交柱分离试试
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jrwyyplt[使用道具]
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用亲和分不开的话,试试G50
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忙活了几天,可结果仍不理想Sad
用梯度浓度还原型谷胱甘肽洗脱(1mM、2.5mM、5mM、10mM)都试了,还是同时洗下来,然后又试了HiPrep 16-60 Sephacryl S-200 ,结果还是没分开,这个柱子根G50的原理差不多吧。
这是过分子筛后的图:分别为过分子筛之前、过分子筛之后收集的不同管的液体(过柱的条件上样量200微升但浓度较高,0.2ml/min,柱体积16-60,洗脱是用50mM tris PH=8,每一毫升收集一管)。最后的那个泳道也有杂带,只是不太清楚,比较弱。如果在样品中加SDS是不是能有助于分离?加的量又应该是多少呢?请高手帮帮忙吧


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下面的杂带应该是GST标签的片断,所以和融合蛋白一样具有亲和作用,这个问题对GST蛋白纯化来说确实很麻烦,而且你的融合蛋白和GST蛋白分子量差别不大,性质应该接近
不知道你是上机器还是手工做呢?
不如试试酶切,看看能否得到较纯的单体蛋白
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当然是机器了,手工做会不会累死?
我的目的蛋白比较小,打兔子免疫效果不好,所以要连上个GST,因此柱上酶切的方法不行啊!
不知道在样品中加入TRITION X-100或者SDS(浓度不知加多少啊?)能不能分开啊?还有干脆不分了,直接切胶后免疫兔子行不行啊? 谁有经验啊?给指点一下吧!
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