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标题:【求助】请各位战友帮我分析一下蛋白总量测定中的...

yhz1973[使用道具]
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【求助】请各位战友帮我分析一下蛋白总量测定中的...


我现在要测定24孔板孔板中细胞的总蛋白量(蛋白量越多=细胞数量越多)。现在有两种方法,大家看哪种更准确些。
方法1:去除培养基后PBS洗2次,然后不消化,直接用裂解液裂解细胞,然后用BCA法测量。
该方法会不会细胞裂解不全,造成实验误差??另外,用什么裂解液较好?因为样本除了做总蛋白,还要做ELISA。
方法2:去培养基后清洗,用EDTA+胰酶消化,消化完全后终止,然后离心收集细胞。用PBS冲洗后再次离心,重复2次。最后加入50ul PBS,然后冻融3次,最后用考马司亮蓝法测定。
该方法成本低点,但是我做了预试后觉得离心的过程中会有细胞丢失,而且如果胰酶没有洗干净的话也会影响实验结果。
大家平时实验中都是如何操作的啊??还有什么更好的方法?因为刚刚接触这方面的东西,请各位战友多提宝贵意见,多谢了!
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bamboo16[使用道具]
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我最近也在做细胞提取蛋白和蛋白定量实验,也有一些问题,大家一起来交流.
除了以上你说的两种方法还有一种方法就是刮细胞.但是需要把握好刮细胞的力度.以前曾经用过,还可以.把细胞刮下来(冰上操作),离心后用PBS冲洗,再离心,加细胞裂解液RIPA BUFFER,4度冰箱1小时.效果还可以.
关于选方法,各有利弊,需要自己尝试.
最近做蛋白提取实验,(与以前不是在一所学校).RIPA BUFFER 和考马斯亮蓝都是自己配的.在刮细胞可能力度没有把握好,可能刮过头了,以至于离心后看不见什么细胞, PBS冲洗后,加RIPA BUFFER,也能使考马斯亮蓝颜色发生改变.开始还很高兴,突然我想试试只有RIPA BUFFER,考马斯亮蓝变化,发现居然也能变色.
我想问问大家,你们配的细胞裂解液能否引起考马斯亮蓝变色?
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yhz1973[使用道具]
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裂解液中的成分与考马斯亮蓝有干扰,推测可能是triton,所以裂解后最后不要用考马斯亮蓝法测量,可以用BCA法。这是实验室老师给我讲的,具体我自己也没有试过。
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flower-201[使用道具]
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我试了两种方法,用胰酶消化下来后加裂解液及直接加裂解液用细胞刮刮。我的感觉是直接加裂解液用细胞刮效果更好些,刮时尽量用力,同时用枪吹吸让裂解液充分浸润,全部过程在冰上操作。
裂解液能引起考马斯亮蓝变色,我查看过相关资料,提示样品中巯基乙醇的浓度可高达1M,二硫苏糖醇的浓度可高达5mM。但受略高浓度的去垢剂影响。需确保SDS低于0.1%,Triton X-100 低于0.1%,Tween 20, 60, 80低于0.06%。(可参考cuturl('http://www.beyotime.com/bradford.htm'))。
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u234[使用道具]
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裂解液提取总蛋白时非常粘稠,该怎么处理呢?我们比较穷,舍不得买DNA酶和RNA酶,请问两位都是怎么处理的?
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yhz1973[使用道具]
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我试了两种方法,用胰酶消化下来后加裂解液及直接加裂解液用细胞刮刮。我的感觉是直接加裂解液用细胞刮效果更好些,刮时尽量用力,同时用枪吹吸让裂解液充分浸润,全部过程在冰上操作。
  ……

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再请教一下,加了裂解液后可不可以不用细胞刮了??因为我的细胞长在材料上,材料的表面不平。另外裂解后蛋白不是已经融解了吗,为什么还要用细胞刮呢???
请赐教!
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bamboo16[使用道具]
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今天试了试反复冻融法,感觉还不错。
具体是:PBS洗过后,加裂解液适量,摇匀,覆盖培养器皿。置-80度冰箱,冻10分钟,取出室温融化。再放置于-80度冰箱10分钟后,取出融化。
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orangecake[使用道具]
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裂解液提取总蛋白时非常粘稠,该怎么处理呢?我们比较穷,舍不得买DNA酶和RNA酶,请问两位都是怎么处理的?

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我是收培养的细胞。很少有粘稠的状况。可能有两个原因:细胞数相对较少、边裂解边吹打。吹打可使DNA断裂而减少粘稠度。若是组织将组织块尽量剪小,用一次性的针头用劲吹打也有效果。当然最简便的方法是用超声.
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orangecake[使用道具]
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再请教一下,加了裂解液后可不可以不用细胞了??因为我的细胞长在材料上,材料的表面不平。另外裂解后蛋白不是已经融解了吗,为什么还要用细胞刮呢???
请赐教!

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用细胞刮是因为细胞是贴壁生长的,而我们加的裂解液往往较少,不刮仅是吹吸的话会有很多的损失。
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831226[使用道具]
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triton确实可以影响考马斯亮蓝,使读书变大,去年我测蛋白浓度是特意翻了书,是什么原理我忘了。
我的方法是对照管也加等量的裂解液,另外标准曲线也要重新用加了裂解液的做。
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