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标题:【求助】SDS-PAGE遇到的问题

tewank[使用道具]
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【求助】SDS-PAGE遇到的问题


各位大侠,
小妹在跑胶的过程中,发现溴芬兰已经跑到了胶的底部,染色脱色后却发现蛋白条带只跑到分离胶的一半,蛋白全集中分离胶的上半部,而下半部却什么都没有,这是什么原因造成的啊?
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yyaxw84[使用道具]
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我个人认为是您的制样的问题了,一般来说小型的电泳槽没一个点样孔的上样量为20 to 40 micrograms/well.过多的话会不利于蛋白的泳动,造成凝胶的超负荷电泳.
此外,不知道您的各种溶液的PH值调好没有啊!
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tewank[使用道具]
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谢谢!不过我的上样量是10ug/孔,应该不会过量,我取复合一下溶液的pH值吧。
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qqshepherd[使用道具]
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你的分离胶浓度过高了
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ffooll[使用道具]
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偶做的也是,后来老板告诉偶就待溴酚蓝跑出后再多跑一段时间,这个时间长短自己估计,另外分离胶长度可以相对高些,而浓缩胶不要太长,忘有所帮助。
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nn255[使用道具]
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我个人认为 是你的样品的问题,我觉得是不是你的loading buffer 在准备的时候,里边的SDS 没有充分的溶解,你在制备loading buffer的时候 也许是 直接将SDS 粉末加到液体里边,这样肯定不会充分的混匀的。个人觉得 往你的样品中加点 SDS 然后 从新煮沸 ,看看结果怎么样!
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hulu呼噜[使用道具]
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有两种原因:一是分离胶的问题,胶的凝固不好,不利于电场的泳动或胶的浓度过大,导致溴芬蓝指示与蛋白泳动不匹配;二是电泳缓冲液的问题,是不是用的时间过长,pH不对等。
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daod[使用道具]
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我出现过这样的问题,以前跑的挺好,改进后恢复正常.
1.电泳缓冲液的问题,用的次数过多,缓冲能力下降,尽管有人说缓冲液可用5-6次,可我觉得还是在4次以内为好.
2.严格配置分离胶,做的多了有时就不太仔细,认为反正浓度小点也没问题,可是会是整个体系混乱,特别是PH.
3.浓缩胶要适合长度,我出问题的时候是浓缩胶过短.
主要的问题在胶的制备,当然样品准备也应按要求来.
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greenbee[使用道具]
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个人认为楼主的情况可能是样品没有裂解充分
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gogo[使用道具]
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我个人也认为有两个原因:
1.分离胶浓度过高,样品分子比较大,走不下来;
2.分离胶的长度问题
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