细胞生物学

常用设备

　　准备室的设备：

　　单蒸馏水蒸馏器、双蒸馏水蒸馏器、酸缸、烤箱、高压锅、储品柜(放置未消毒物品)、储品规(放置消毒过的物品)、包装台。

　　配液室的设备：

　　扭力天平和电子天平(称量药品)、PH计(测量培养用液PH值)、磁力搅拌器(配置溶液室搅拌溶液)。

　　培养室的设备：

　　液氮罐、储品柜(存放杂物)、日光灯和紫外灯、空气净化器系统、低温冰箱(-80℃)、空调、二氧化碳缸瓶、边台(书写实验记录)。必须放在无菌间的设备：离心机(收集细胞)、超净工作台、倒置显微镜、CO2孵箱(孵育培养物)、水浴锅、三氧消毒杀菌机、4℃冰箱(放置serum和培养用液)。

　　无菌操作

　　无菌室的灭菌：

　　1.定期打扫无菌室：每周打扫一次，先用自来水拖地、擦桌子、超净工作台等，然后用3‰来苏尔或者新洁尔灭或者0.5%过氧乙酸擦拭。

　　2.CO2孵箱(培养箱)灭菌：先用3‰新洁尔灭擦拭，然后用75%酒精擦拭或者0.5%过氧乙酸，再用紫外灯照射

　　3.实验前灭菌：打开紫外灯、三氧杀菌机、空气净化器系统各20-30分钟

　　4.实验后灭菌：用75%酒精(3‰新洁尔灭)擦拭超净台、边台、倒置显微镜的载物台。

　　实验人员的无菌准备：

　　1.肥皂洗手。

　　2.穿好隔离衣、带好隔离帽、口罩、放好拖鞋

　　3.用75%酒精棉球擦净双手。

　　无菌操作的演示：

　　1.凡是带入超净工作台内的酒精、PBS、培养基、胰蛋白酶的瓶子均要用75%酒精擦拭瓶子的外表面

　　2.靠近酒精灯火焰操作。

　　3.器皿使用前必须过火灭菌

　　4.继续使用的器皿(如瓶盖、滴管)要放在高处，使用时仍要过火。

　　5.各种操作要靠近酒精灯，动作要轻、准确，不能乱碰。如吸管不能碰到废液缸。

　　6.吸取两种以上的使用液时要注意更换吸管，防止交叉污染。

　　器械的清洗和消毒

　　玻璃器械洗消：

　　一、新的玻璃器皿的洗消：

　　1.自来水刷洗，除去灰尘。

　　2.烘干、泡盐酸：烤箱中烘干，然后再浸入5%稀盐酸中12小时以除去脏物、铅、砷等物。

　　3.刷洗、烘干：12小时后立即用自来水冲洗，再用洗涤剂刷洗，自来水冲干净后用烤箱烘干。

　　4.泡酸、清洗：用清洁液(重铬酸钾120g：浓硫酸200ml：蒸馏水1000ml)浸泡12小时，然后从酸缸内捞出器皿用自来水冲洗15次，最后蒸馏水冲洗3-5次和用双蒸水过3次。

　　5.烘干、包装：洗干净后先烘干，然后用牛皮纸(油光纸)包装。

　　6.高压消毒：包装好的器皿装入高压锅内盖好盖子，打开开关和安全阀，当蒸气成直线上升时，关闭安全阀，当指针指向15磅时，维持20-30分钟。

　　7.高压消毒后烘干

　　二、旧的玻璃器皿的洗消：

　　1.刷洗、烘干：使用过的玻璃器皿可直接泡入来苏尔液或洗涤剂溶液中，泡过来苏尔溶液(洗涤剂)的器皿要用清水刷洗干净，然后烘干。

　　2.泡酸、清洗：烘干后泡入清洁液(酸液)，12小时后从酸缸内捞出器皿立即用自来水冲洗(避免蛋白质干涸后粘附于玻璃上难以清洗)，再用蒸馏水冲洗3次。

　　3.烘干、包装：洗干净的器皿烘干后取出用牛皮纸(油光纸)等包装，以便于消毒储存及防止灰尘和再次被污染。

　　4.高压消毒：包装好的器皿装入高压锅内，盖好盖子，打开开关和安全阀，随着温度的上升安全阀冒出蒸气，当蒸气成直线冒出3-5分钟后，关闭安全阀，气压表指数随之上升，当指针指向15磅时，调节电开关维持20-30分钟即可。(玻璃培养瓶消毒前可将胶帽轻轻盖上)

　　5.烘干备用：因为高压消毒后器皿会被蒸气打湿，所以要放入烤箱内烘干备用。

　　金属器械洗消：

　　金属器皿不能泡酸，洗消时可先用洗涤剂刷洗，后用自来水冲干净，然后用75%酒精擦拭，再用自来水，然后用蒸馏水冲洗，再烘干或空气中晾干。放入铝制盒内包装好在高压锅内15磅高压(30分钟)消毒，再烘干备用。

　　橡胶和塑料：

　　橡胶和制品通常处理方法是：先用洗涤剂洗刷干净，再分别用自来水和蒸馏水冲干净，再用烤箱烘干，然后根据不同品质进行如下的处理程序：

　　1 . 针式滤器帽不能泡酸液,用NaOH泡6-12小时,或者煮沸20分钟,在包装之前要装好滤膜两张，安装滤膜时注意光面朝上(凹向上)，然后将螺旋稍微拧松一些，放入铝盒中在高压锅内15磅30分钟消毒，再烘干备用。注意在超净台内取出使用时应该立即将螺旋旋紧。

　　2. 胶塞烘干后用2%氢氧化钠溶液煮沸30分钟(用过的胶塞只要用沸水处理30分钟)，自来水洗净，烘干。然后再泡入盐酸液30分钟，再用自来水，蒸馏水，三蒸水洗净，烘干。最后装入铝盒内高压消毒，烘干备用。

　　3. 胶帽，离心管帽烘干后只能在2%氢氧化钠溶液中浸泡6-12小时(切记时间不能过长)，自来水洗净，烘干。然后再泡入盐酸液30分钟，再用自来水，蒸馏水，三蒸水洗净，烘干。最后装入铝盒内高压消毒，烘干备用。

　　4. 胶头可用75%酒精浸泡5分钟，然后紫外照射后使用即可。

　　5.塑料培养瓶，培养板，冻存管：

　　6.其他消毒方法：有的物品既不能干燥消毒，又不能蒸气消毒，可用70%酒精浸泡消毒。塑料培养皿打开盖子，放在超净台台面上，直接暴露在紫外线下消毒。也可用氧化乙烯消毒塑料制品，消毒后需要用2—3周时间洗除残留的氧化乙烯。用20000—100000rad的r射线消毒塑料制品效果最好。

　　为了防止清洗器材已消毒与末消毒发生混淆，可在纸包装后，用密写墨水作好标记。其法即用沾水笔或毛笔沾以密写墨水，在包装纸上作一记号，平时这种墨水不带痕迹，一经高温，即出现字迹，从而可以判定它们是否消毒。密写墨水的配制：氯化钻(CoC12•6H2o)2g，30%盐酸10m1，蒸馏水88m1。

　　注意事项：

　　1.严格执行高压锅的操作规程：高压消毒时，先检查锅内是否有蒸馏水，以防高压时烧干，水不能过多因为其将使空气流畅受阻，会降低高压消毒效果。检查安全阀是否通畅，以防高压时爆炸。

　　2.安装滤膜时注意光面朝上：注意滤膜光滑一面是正面，要朝上，否则起不到过滤的作用。

　　3.注意人体的防护和器皿的完全浸泡：A.泡酸时要戴耐酸手套，防止酸液溅起伤害人体。B.从酸缸内捞取器皿时防止酸液溅到地面，会腐蚀地面。C.器皿浸入酸液中要完全，不能留有气泡，以防止泡酸不彻底。

　细胞培养用液的配制与消毒

　　器材与试剂：

　　干粉型培养基、胰蛋白酶，青霉素、链霉素. 纯净水系统、电子天平、PH计、磁力搅拌器。

　　具体步骤：

　　一. 水的制备：

　　细胞培养用水必须非常纯净，不含有离子和其他的杂质。需要用新鲜的双蒸水、三蒸水或纯净水

　　二.PBS的制备与消毒(也可用于其它BSS，如：Hanks，D-Hanks液的配制)：

　　1.溶解定容：将药品(NaCl 8.0g，KCl 0.2g，Na2HPO4•H2O 1.56g，KH2PO4 0. 2g )倒入盛有双蒸水的烧杯中，玻璃棒搅动，充分溶解，然后把溶液倒入容量瓶中准确定容至1000ml，摇匀即成新配制的PBS溶液。

　　2.移入溶液瓶内待消毒：将PBS倒入溶液瓶(大的吊针瓶)内，盖上胶帽，并插上针头放入高压锅内8磅消毒20分钟。注意高压消毒后要用灭菌蒸馏水补充蒸发掉的水份。

　　三. 胰蛋白酶溶液的配制与消毒：

　　胰蛋白酶的作用是使细胞间的蛋白质水解从而使细胞离散。不同的组织或者细胞对胰酶的作用反应不一样。胰酶分散细胞的活性还与其浓度、温度和作用时间有关，在pH为8.0、温度为37℃时，胰酶溶液的作用能力最强。使用胰酶时，应把握好浓度、温度和时间，以免消化过度造成细胞损伤。因Ca2+、Mg2+和血清、蛋白质克降低胰酶的活性，所以配制胰酶溶液时应选用不含Ca2+、Mg2+的BSS，如：D-Hanks液。终止消化时，可用含有血清培养液或者胰酶抑制剂终止胰酶对细胞的作用。

　　1.称取胰蛋白酶：按胰蛋白酶液浓度为0.25%，用电子天平准确称取粉剂溶入小烧杯中的双蒸水(若用双蒸水需要调PH到7.2左右)或PBS(D-hanks)液中。搅拌混匀，置于4℃内过夜。

　　2.用注射滤器抽滤消毒：配好的胰酶溶液要在超净台内用注射滤器(0.22微米微孔滤膜)抽滤除菌。然后分装成小瓶于-20℃保存以备使用。

　　四.青、链霉素溶液的配制于消毒

　　1. 所用纯净水(双蒸水)需要15磅高压20分钟灭菌。

　　2.具体操作均在超净台内完成。青霉素是80万单位/瓶，用注射器加4ml灭菌双蒸水。链霉素是100万单位/瓶，加5ml灭菌双蒸水，即每毫升各为20万单位。

　　3.使用时溶入培养液中，使青链霉素的浓度最终为100单位/ml。1单位=1微克?

　　五.RPMI1640的制备与消毒：

　　1.溶解、调PH值、定容：先将培养基粉剂加入培养液体积2/3的双蒸水中,并用双蒸水冲洗包装袋2-3次(冲洗液一并加入培养基中),充分搅拌至粉剂全部溶解,并按照包装说明添加一定的药品.然后用注射器向培养基中加入配制好的青链霉素液各0.5ml, 使青链霉素的浓度最终各为100单位/ml。然后用一个当量的盐酸和NaOH调PH到7.2左右。最后定容至1000ml，摇匀。

　　2.安装蔡式滤器：安装时先装好支架，按规定放好滤膜，用螺丝将不锈钢滤器和支架连接好。然后卸下支架腿分别用布包好待消毒。

　　3.抽滤：配制好的培养液通常用滤器过滤除菌。通常用蔡式滤器在超净工作台内过滤。

　　4.分装：将过滤好的培养液分装入小瓶内置于4℃冰箱内待用。

　　5.使用前要向100ml培养液中加入1ml谷氨酰胺溶液(4℃时两周有效)。

　　六.血清的灭火：

　　细胞培养常用的是小牛血清，新买来的血清要在56℃水浴中灭火30分钟后，再经过抽滤方可加入培养基中使用。

　　七.HEPES溶液：

　　HEPES的化学全称位羟乙基呱嗪乙硫磺酸(N’-a-hydroxythylpiperazine-N’- ethanesulfanic acid )。对细胞无毒性作用。它是一种氢离子缓冲剂，能较长时间控制恒定的pH范围。使用终浓度为10-50mmol/L，一般培养液内含20mmol /LHEPES即可达到缓冲能力。

　　1mol/L HEPE缓冲液配制方法如下：

　　准确称取HEPTS 238.3g，加入新鲜三蒸水定容至1L。过滤除菌，分装后4℃保存。

　　注意：因为现在市售HEPES为约10g包装的小瓶，所以可根据实际情况灵活配制，但是要保证培养液内HEPES的终浓度仍然为20m mol/L 。如：称取4.766克HEPES溶于20ml三蒸水中，过滤除菌后可完全(20ml)加入1L培养液中，或者每100ml培养液中加入2ml即可。

　　八.谷氨酰胺：

　　合成培养基中都含有较大量的谷氨酰胺，其作用非常重要，细胞需要谷氨酰胺合成核酸和蛋白质，谷氨酰胺缺乏要导致细胞生长不良甚至死亡。在配制各种培养液中都应该补加一定量的谷氨酰胺。由于谷氨酰胺在溶液中很不稳定，4℃下放置1周可分解50%，故应单独配制，置于-20℃冰箱中保存，用前加入培养液。加有谷氨酰胺的培养液在4℃冰箱中储存2周以上时，应重新加入原来的谷氨酰胺。

　　一般培养液中谷氨酰胺的含量为1～4mmol/L。可以配制200mmol/L谷氨酰胺液贮存，用时加入培养液。配制方法为，谷氨酰胺2.922g溶于三蒸水加至100ml即配成200mmol/L的溶液，充分搅拌溶解后，过滤除菌，分装小瓶，-20℃保存，使用时可向100ml培养液中加入1ml谷氨酰胺溶液。

　　九.肝素溶液的配制：

　　含有肝素的培养液可以使内皮细胞纯度提高，肝素加入全培养液中最终浓度为50ug/ml。因为现在市售的多为肝素钠，包装为约为0.56克/瓶，配制时，可将其溶于100ml三蒸水中，定容，过夜，然后过滤除菌，分装小瓶，保存温度为¬¬ ℃ 。使用时，向100ml培养液中加入1ml(精确可加入0.9ml)即可。

　　十. Ⅰ型胶原酶：

　　0.1%Ⅰ型胶原酶溶液同胰蛋白酶一样配制和消毒灭菌。注意：因为Ⅰ型胶原酶分子颗粒比胰酶大，不容易过滤，因此可以用蔡式滤器过滤除菌。分装入10ml小瓶-20℃保存。

　　十一.明胶溶液：

　　因为明胶难于过滤，所以配制0.1%明胶溶液必须用无菌的PBS配制。所以制备过程中必须要注意无菌操作。首要的问题是如何无菌准确称量0.1克(配成100ml溶液)—即解决无菌分装药品的问题。其次要注意即使是01.的溶液，明胶也难溶，因此要充分摇匀，过夜放置，然后无菌分装入50ml小瓶中，4℃保存。

　　其他培养用液的配制：

　　20ug/ml内皮生长因子，

　　注意事项：

　　1.配制溶液时必须用新鲜的蒸馏水。

　　2.安装蔡式滤器时通常使用孔径0.45微米 和0.22微米滤膜各一张，放置位置为0.45的位于0.22微米的滤膜上方，并且要特别注意滤膜光面朝上。

　　3.配制RPMI1640培养基时因为还要加入小牛血清，而小牛血清略偏酸性，为了保证培养液PH值最终为7.2，可在配制时调PH至7.4。

　　细胞传代培养(消化法)

　　具体操作：

　　一. 传代前准备：

　　1.预热培养用液：把已经配制好的装有培养液、PBS液和胰蛋白酶的瓶子放入37℃水浴锅内预热。

　　2.用75%酒精擦拭经过紫外线照射的超净工作台和双手。

　　3.正确摆放使用的器械：保证足够的操作空间，不仅便于操作而且可减少污染。

　　4.点燃酒精灯：注意火焰不能太小。

　　5.准备好将要使用的消毒后的空培养瓶，放入微波炉内高火，8分钟再次消毒。

　　6.取出预热好的培养用液：取出已经预热好的培养用液，用酒精棉球擦拭好后方能放入超净台内。

　　7.从培养箱内取出细胞：注意取出细胞时要旋紧瓶盖，用酒精棉球擦拭显微镜的台面，再在镜下观察细胞。

　　8.打开瓶口：将各瓶口一一打开，同时要在酒精灯上烧口消毒。

　　二.胰蛋白酶消化;

　　1.加入消化液：小心吸出旧培养液，用PBS清洗(冲洗)，加入适量消化液(胰蛋白酶液)，注意消化液的量以盖住细胞最好，最佳消化温度是37℃。

　　2. 显微镜下观察细胞：倒置显微镜下观察消化细胞，若胞质回缩，细胞之间不再连接成片，表明此时细胞消化适度。

　　3.吸弃消化液加入培养液：弃去胰蛋白酶液，注意更换吸管，加入新鲜的培养液。

　　三.吹打分散细胞：

　　1.吹打制悬：用滴管将已经消化细胞吹打成细胞悬液。

　　2.吸细胞悬液入离心管：将细胞悬液吸入10ml离心管中。

　　3.平衡离心：平衡后将离心管放入台式离心机中，以1000转/分钟离心6-8分钟。

　　4.弃上清液，加入新培养液：弃去上清液，加入2ml培养液，用滴管轻轻吹打细胞制成细胞悬液。

　　四.分装稀释细胞：

　　1.分装：将细胞悬液吸出分装至2-3个培养瓶中，加入适量培养基旋紧瓶盖。

　　2.显微镜下观察细胞：倒置显微镜下观察细胞量，必要是计数。注意密度过小会影响传代细胞的生长，传代细胞的密度应该不低于5×105/ml。最后要做好标记。

　　五.继续培养：

　　用酒精棉球擦拭培养瓶，适当旋松瓶盖，放入CO2培养箱中继续培养。传代细胞2小时后开始贴附在瓶壁上。当生长细胞铺展面积占培养瓶底面积25%时为一个+，占50%为++，占75%时为+++。

　　传代细胞培养注意事项：

　　1.严格的无菌操作

　　2.适度消化：消化的时间受消化液的种类、配制时间、加入培养瓶中的量等诸多因素的影响，消化过程中应该注意培养细胞形态的变化，一旦胞质回缩，连接变松散，或有成片浮起的迹象就要立即终止消化。

　　附：EDTA(0.02%乙二胺四乙酸二钠)消化液配方：

　　EDTA 0.20g，NaCl 8.00g， KCl 0.20g， KH2PO4 0.02g， 葡萄糖 2.00g，0.5%酚红4ml，加入蒸馏水定容至1000ml。10磅20min高压灭菌，使用时调节PH值到7.4。注意EDTA不能被血清中和，使用后培养瓶要彻底清洗，否则再培养时细胞容易脱壁

　　细胞的复苏

　　细胞复苏的原则-快速融化：必须将冻存在-196℃液氮中的细胞快速融化至37℃，使细胞外冻存时的冰晶迅速融化，避免冰晶缓慢融化时进入细胞形成再结晶，对细胞造成损害。

　　具体操作

　　一. 实验前准备：

　　1.将水浴锅预热至37℃

　　2.用75%酒精擦拭紫外线照射30min的超净工作台台面。

　　3.在超净工作台中按次序摆放好消过毒的离心管、吸管、培养瓶等等。

　　二.取出冻存管：

　　1.根据细胞冻存记录按标签找到所需细胞的编号。

　　2.从液氮罐中取出细胞盒，取出所需的细胞，同时核对管外的编号。

　　三.迅速解冻：

　　1.迅速将冻存管投入到已经预热的水浴锅中迅速解冻，并要不断的摇动，使管中的液体迅速融化。

　　2.约1-2min后冻存管内液体完全溶解，取出用酒精棉球擦拭冻存管的外壁，再拿入超净台内。

　　四.平衡离心：

　　用架盘天平平衡后，放入离心机中3000r/min 离心3min

　　五.制备细胞悬液：

　　1.吸弃上清液。

　　2.向离心管内加入10ml培养液，吹打制成细胞悬液。

　　六.细胞计数：

　　细胞浓度以5×105/ml为宜。

　　七.培养细胞

　　将复合细胞计数要求的细胞悬液分装入培养瓶内，将培养瓶放入37℃和5%CO2的培养箱内2-4小时(或者24-48小时)后换液继续培养培养，换液的时间由细胞情况而定。

　　初学者易犯错误：

　　1水浴锅未预热或者未预热到37℃。

　　2.水浴锅内冻存管太多，导致传热不佳，使融化时间延长。

　　3.离心前忘记平衡，导致离心机损坏和细胞丢失。

　　4.一次复苏细胞过多，忘记更换吸头和吸管，导致细胞交叉污染。

　　细胞计数

　　实验原理：当待测细胞悬液中细胞均匀分布时，通过测定一定体积悬液中的细胞的数目，即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。

　　具体操作：

　　一.准备工作：

　　取一瓶传代的细胞，按照《传代细胞培养(消化法)》中的传代方法繁殖细胞，待长成单层后以被使用。

　　二.细胞悬液制备：

　　细胞悬液的制备方法是用0.25%的胰蛋白酶液消化、PBS液洗涤后，加入培养液(或Hanks液或PBS等平衡盐溶液)，吹打制成待测细胞悬液。

　　三.细胞计数：

　　1.盖好盖玻片：取一套血球计数板，将特制的盖玻片盖在血球计数槽上。

　　2.制备计数用的细胞悬液：用吸管吸5滴细胞悬液到一离心管中，加入5滴台盼蓝染液(0.4%)或苯胺黑，活细胞不会被染色，加入染液后就可以在显微镜下区别活细胞和死细胞。

　　3.将细胞悬液滴入计数板：将待测细胞悬液吹均匀，然后吸取少量悬液沿盖片边缘缓缓滴入，要保证盖片下充满悬液，注意盖片下不要有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中。

　　4.统计四个大格的细胞数：将血球计数板放于显微镜的低倍镜下观察，并移动计数板，当看到镜中出现计数方格后，数出四角的四个大铬(每个大格含有16个中铬)中没有被染液染上色的细胞数目。

　　5.计算原细胞悬液的细胞数:按照下面公式计算细胞密度：

　　(细胞悬液的细胞数)/ml= ( 四个大格子细胞数/4) ×2×104

　　说明：公式中除以4因为计数了4个大格的细胞数。

　　公式中乘以2因为细胞悬液于染液是1：1稀释。

　　公式中乘以104因为计数板中每一个大格的体积为：

　　1.0mm(长)×1.0mm(宽)×0.1mm(高)=0.1mm3 而 1ml=1000mm3

　　四.细胞计数要点：

　　1.进行细胞计数时，要求悬液中细胞数目不低于104个/ml，如果细胞数目很少要进行离心再悬浮于少量培养液中;

　　2.要求细胞悬液中的细胞分散良好，否则影响计数准确性。

　　3.取样计数前，应充分混匀细胞悬液，尤其时多次取样计数时更要注意每次取样都要混匀，以求计数准确;

　　4. 数细胞的原则是只数完整的细胞，若细胞聚集成团时，只按照一个细胞计算。如果细胞压在格线上时，则只计上线，不计下线，只计右线，不计左线。

　　5. 操作时，注意盖片下不能有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中，否则要重新计数。

　　五.初学者易犯的错误：

　　1. 计数前未将待测悬液吹打均匀。

　　2. 滴入细胞悬液时盖玻片下出现气泡。

　　3. 滴入悬液时的量太多，至使细胞悬液流入旁边的槽中。

　　六.本实验特殊试剂的配制：

　　4%台盼蓝母液：称取4克台盼蓝，加入少量蒸馏水研磨，加双蒸水至100毫升，用滤纸过滤，4℃保存。

　　使用液：使用时，用PBS稀释母液至0.4%即可。

　　细胞的冻存

　　1.先将冻存管放入4℃冰箱，约40min。

　　2.接着置于-20℃冰箱，约30-60min。

　　3.置于-80超低温冰箱中放置过夜。

　　4.置于液氮罐中长期保存。

　　5同时做好冻存记录，在自己的笔记本和冻存记录本上均要记录。

　　注意事项：

　　1.使用DMSO前，不需要进行高压灭菌，它本身就有灭菌的作用。高压灭菌反而会破华它的分子结构，以至于降低冷冻保护效果。在常温下，DMSO对人体有害，故在配制时最好戴上手套操作。

　　2.不宜将冻存细胞放置在0℃～-60℃这一温度范围内过久，低温损伤主要发生在这一温度区内，是“危险温区”。

　　3.注意定期检查液氮罐内液氮量，及时添加。