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标题:【求助】一个做qPCR时RNA和cDNA浓度的问题

ns5fan[使用道具]
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11
 

我设了复孔,去除了点样的误差,这样的CT值差别应该不大吧?
而且我每次的步骤都是固定的,每次的GAPDH组CT值都在18左右,很稳定。
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bs4665[使用道具]
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12
 
保险的做法就是,在后期数据处理的时候,把所有内参都设定为1,在这种情况下,理论上待检基因的表达应该是真实的.
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ns5fan[使用道具]
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13
 
遇到一个问题:
实验室里有同学做这个实验时,在qPCR前再次测所谓的浓度,“重新定量”,最后跑出来的结果是:内参CT值大小不齐,而目的基因的CT值都差不多大小。
有高手能解释一下吗?我只知道这样做肯定不科学,但不明白为什么。
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14
 

我们实验室的做法同上,RT前定量,去=取1ul反应产物上Q-RT-PCR.结果内参还是很齐的,最后用双Delta,以control组的相对表达量为1,得出目的基因的表达变化。
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15
 

我同意用内参校订的方法,但我也认为初始浓度还是初步均一一下为好,否则,假定一个比较极端的情况,一个用了50ngRNA,一个用了5ugRNA,同样的RT反应,其他成分添加的一样多,逆转录的效率能一样吗?而且接下来的PCR过程中,内参的Ct值如果差了5-6,那么同样可以推出PCR过程中模板量差距很大,那么PCR 过程的扩增效率也有很大差异,这样即使扣除内参,你觉得数据可信吗?
我最近遇到的怪事情是RNA浓度已经相对很一致,但是内参的Ct差了4,所以现在我不知道待测基因扣除内参来进行比较的结果可不可靠。或者真的是我的“内参”不是真的稳定?那也差太多了,正苦恼中..........
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am10[使用道具]
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用分光光度计测RNA的含量其实是比较不准确的,OD280的读数与杂质含量关系很大。同时,不同样品杂质含量差异可能会比较大,会引起反转录效率不同。这解释了既使RNA含量一样,realtime PCR后内标基因的Ct差异可能会有差别。如果cDNA模板差异过大,通过delta delta Ct计算得到的结果是相当不可靠的。个人觉得样品间内标基因Ct差值应该在1以内,最好是0.5。
如果有人问,要是内标基因Ct差值大于1怎么办?很简单,稀释cDNA模板。我的经验是,Ct差值为1,稀释cDNA模板1.8-2.2倍。这个需要摸一下,多做几次。
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abc816[使用道具]
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利用OD260/OD280来调整RNA的浓度只是为了尽可能得到比较统一的扩增效率,但是RNA模板中的成分很复杂,不同样本中的PCR抑制因子的含量也不同,得到的cDNA的浓度可能仍然不一样,不过这些都不影响后期结果的处理,利用内参基因双delta计算公式就是为了校正不同样本中的浓度不同。不同样本内参基因的Ct不同,很正常,如果每一个都一样才叫奇怪呢,内参基因也就失去它的价值了!不同样本的内参Ct不可能一样,但是同一样本的重复间一定要相差不大!
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dog002[使用道具]
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18
 

个人认为
反转录前必须要测浓度,不同浓度的RNA反转录效率不同,并且试剂盒说明RNA量不要超过一定浓度。不测浓度怎么知道是不是超过浓度限制。一般来说,总RNA量相同,反转录后PCR内参基本平行,因此不需要测cDNA浓度。但也有内参基因不平行的情况,缺氧处理时就常出现这种情况。如果总RNA量相同而内参不平行,可能是内参有问题,没有绝对的内参,可以更换内参试试。因此不测浓度,只用内参相对定量是不科学的,要在RNA总浓度一致并且内参也比较平行的情况下才能相当定量。
和Northern类似,要把样品量调一致再上样是同样的道理。
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dog002[使用道具]
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我同意用内参校订的方法,但我也认为初始浓度还是初步均一一下为好,否则,假定一个比较极端的情况,一个用了50ngRNA,一个用了5ugRNA,同样的RT反应,其他成分添加的一样多,逆转录的效率能一样吗?而且接下来的PCR过程中,内参的Ct值如果差了5-6,那么同样可以推出PCR过程中模板量差距很大,那么PCR 过程的扩增效率也有很大差异,这样即使扣除内参,你觉得数据可信吗?
我最近遇到的怪事情是RNA浓度已经相对很一致,但是内参的Ct差了4,所以现在我不知道待测基因扣除内参来进行比较的结果可不可靠。或者真的是我的“内参”不是真的稳定?那也差太多了,正苦恼中..........
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建议更换内参试试。
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dior[使用道具]
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同样的细胞,不同处理后,提取RNA,做qPCR相对定量,内参基因的CT值有一两个处理组相差比较大,其他基本没什么差异,这样结果可靠吗?是不是只要看待测基因扣除内参来进行比较就可以?不同组内参基因的CT值要一样吗?谢谢
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