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标题:一本待出版的有关PCR技术的新书[转自 丁香园论坛]

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实时荧光定量PCR技术是将PCR从定性检测发展到定量检测的重大飞跃 ,这无疑扩大了它的应用范围 ,也提高了其应用价值。与常规 PCR比较起来 ,它具备更为突出的优点 ,近几年国内外医学临床和实验中报导了Taq Man技术的优点,它具有良好的敏感性和特异性。特异性方面 ,用以检测病原体的拭子样品,应用 Taq Man探针和常规PCR比较,特异性分别为96.5%和92.9 % ,检测外周血样品的特异性为96.7%和95.6% ,特异性之间的差异无显著性( P >0.05)。敏感性方面 ,Taq Man技术明显高于常规PCR。据陈效友等试验结果,纯化的结核分支杆菌染色体基因组 DNA经751型紫外分光光度计定量 ,从 100ng/μL开始,10倍稀释至1fg,并对结核分支杆菌菌体进行10倍稀释 ,分别进行Taq Man-PCR检测3次,结果显示 PCR的检测灵敏度达1pgDNA和20个菌体/m L,而Taq Man-PCR的检测灵敏度达10fgDNA和 1~ 5个菌体 /m L。也就是说 ,Taq Man技术的检测灵敏度要比常规 PCR高 10~ 100倍。德国的B.Schweiger等用Taq Man-PCR检测流感病毒 A、B型和 15个亚型中,100倍稀释时,灵敏度可达0.1TCID50,近似10个病毒 DNA,而常规PCR约为100~200病毒DNA。Taq Man技术的优点还在于由于全程的闭管操作,没有 PCR的后处理过程 ,因此污染率降低,克服了常规PCR污染率高造成假阳性的致命弱点。又由于其标准曲线的动力学范围广 ,为精确定量提供了较大的可信区间。 Taq Man技术采用的是外标准曲线的定量方法 ,它比内标法和半定量法要准确得多 ,而且 ,荧光探针高度重现性的特点保证了定量检测的稳定性。另外,定量过程的全自动化、高效率为其商品化提供了可行办法。实时荧光定量PCR技术使用了“内对照”系统 ,可校正 PCR效率获得定量结果。实时荧光定量PCR技术使用即时法 ,有效地解决了传统定量只能终点检测的局限 ,实现了每一轮循环均检测一次荧光信号的强度,并记录在电脑软件中,Ct值代表样品的浓度 ,通过对每个样品 Ct值的计算,常规法须在 PCR完成后测出全部的 PCR产物量 ,再确定原样品浓度。实时荧光定量PCR技术无需内标而采用外标准曲线定量 ,其原理根据 Ct值的重现性以及 Ct值与起始模板的线性关系。用实时荧光定量PCR技术检测,循环数约 20~24个 ,而常规 PCR法需使用 34循环。然而 ,Taq Man技术也有其不足之处尚未解决 ,如假阴性结果,这有可能是由于扩增体系中存在抑制物( inhibitors)而导致的结果或由于部分病原体存在序列缺损,这些问题有待进一步研究。另外,Taq Man荧光探针采用了酶外切活性,因此定量时常受酶性能的影响。
(四) 实时荧光定量PCR技术的应用
实时荧光定量PCR技术鉴定病原体的工作流程部分与常规PCR方法基本相似 ,要进行标本的前处理、DNA制备、设计引物、DNA模板扩增等。而 Taq Man-PCR使用的仪器、试剂、统计学方法不同 ,除常规引物外 ,它需设计并使用两端标记了荧光素的DNA探针,在 PCR反应体系中添加荧光染料SYBR Green I,随着产物链的延伸 ,Taq酶沿着 DNA模板移动到荧光标记探针结合位置,发挥 5′端~ 3′端外切酶活性 ,将荧光探针切断使报告荧光基团游离,然后通过Taq Man检测仪器测报告荧光信号 ,荧光信号的强弱由所测的Ct值确定,大于一定值为阳性,利用标准曲线计算出样品的起始拷贝数,进行定量分析。目前实时荧光定量PCR技术在医学和分子生物学领域已得到广泛应用,尤其是对RNA定量分析及基因遗传突变分析。主要应用于3个方面 :病原检测 (即病毒、细菌、霉菌等 )、基因表达(即细胞因子、生长因子、转录因子等 )和等位基因的鉴定(单核苷酸多态性( Single nucleotide polymorphism,SNP)的检测。在医学临床上已用实时荧光定量PCR技术诊断各种病原体 ,如流感病毒、人类免疫缺陷病毒( HIV)、结核分支杆菌、布鲁氏菌、大肠杆菌、性病病原体等。用 Taq Man技术检测致病性钩端螺旋体时可作出精确诊断 ,可避免使用 ELISA和 SAT等检测时出现假阳性的结果。通过实验和临床比较 ,常规PCR方法阳性率明显高于培养法 ,而 Taq Man技术检出标本阳性率高于常规 PCR。实时荧光定量PCR技术在兽医诊断学中也开始推广使用 ,在检测牛病毒性腹泻病毒 ( BVDV)、禽分支杆菌、牛布鲁氏菌、鹦鹉衣原体、猫冠状病毒等多种病原体的诊断和鉴别中陆续被采用。用实时荧光定量PCR技术诊断鸡新城疫和禽流感是特异性和敏感性较高的有效方法 ,并可区分新城疫病毒毒株的强毒、中间毒和弱毒株的差异。Cristian M L等已用Taq Man-PCR成功地建立了实时荧光定量检测技术及应用猫免疫缺陷病毒 ( FIV)疫苗中RNA和DNA的定量系统。实时荧光定量PCR技术还被应用于转基因食品及农产品的定量分析(如转基因大豆和玉米等 )。使用 ABI-7700型检测仪可准确测出食品中转基因成份的含量。人类基因组计划中,用实时荧光定量PCR技术可同时检测多种基因,比单独检测每一个基因提供更多有效的信息。在胚胎植入前的遗传学诊断中也使用了Taq Man技实时荧光定量PCR技术。在分子生物学中, 实时荧光定量PCR技术主要用于基因表达的定量检测和等位基因的鉴别。目前已建立了不同物种之间,基因表达定量的Taq Man PCR实时系统 ,此系统可靠性高。还可应用实时 Taq Man PCR检测基因突变和基因组的不稳定性。另外,用该技术对致癌基因进行扩增和检测肿瘤抑制子基因的缺失等。实时荧光定量PCR技术应用于SNP研究及基因表达分析包括 SNP发现(discovery)、SNP验证(validation)以及 SNP筛选( Screening or Scoring)。根据 SNP研究的不同阶段,解决方案选择包括测序法、单一核苷酸延伸法以及 Taq-Man MGB探针法。
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(五) 实时荧光定量PCR技术的研究进展
美国应用生物系统公司又最新推出了一种Taq-Man MGB荧光探针。与常规Taq Man荧光探针相比,一是这种探针 3′端标记了自身不发光的淬灭荧光分子,以取代常规可发光的 TAMRA荧光标记 ,这一新技术使荧光本底降低,荧光光谱分辩率得以大大改善。二是探针3′端另结合了 Minor groove binder结合物,使得探针的Tm值提高,大大增加了探针的杂交稳定性。用Taq Man MGB荧光探针检测SNP,其探针长度在13~18个碱基之间 ,而常规 Taq Man长度较多时可达30~40个碱基,探针长度越长,其SNP识别率越低。新型Taq-Man MGB探针使荧光定量 PCR技术既可进行基因定量分析 ,又可分析基因突变 ,有望成为基因诊断和个体化用药的首选技术平台。实时荧光定量PCR技术另一种应用就是分子信标( molecular beacon)。其反应原理是1996年Tyagi等提出的“分子信标”概念。也有人译为“分子灯塔”,因其在与核酸分子互补结合之后荧光素便能开始发光,故称为“分子灯塔”。“分子信标”是一种茎环状发夹型探针 ,也叫Beacon探针,其茎环状部分与靶序列互补,位于主干部分的 5′和 3′端分别标记报告荧光 R和淬灭荧光Q。正常时,发夹呈环形关闭状态 ,报告荧光和淬灭荧光相距很近 ,报告荧光被淬灭。PCR扩增时,探针与模板杂交,发夹展开,报告荧光和淬灭荧光拉开,从而释放荧光,即在退火时可测定荧光。而在PCR的延伸阶段 ,探针又从模板上解离,重新形成茎环结构 ,荧光消失。荧光强度与扩增产物成正比 ,随着每次循环扩增产物的增加 ,其荧光强度也增加 ,它可反映每次扩增末期扩增产物积累的量。为了配合 Taq Man实时荧光定量检测,可在因特网下载探针设计软件 ,在因特网上有丰富的生物应用软件资源 ,可供研究人员使用。Taq Man探针设计软件 Beacon Designer2.0.exe是一个独立的核酸序列分析工具和 Beacon设计软件包 ,其中包含多媒体演示程序、功能介绍、运行步骤等项内容 ,用于实时 PCR技术、分子信标、Taq Man探针设计以及常规 PCR引物设计。在网上可下载软件 demo版 (约12Mb) ,注册版 18 8 5美元。访问数据来自Entrez或db SNP,可在线搜索BLAST序列,该软件十分实用 ,功能强大,快速且准确,可供进行实时定量检测。
Taq Man实时荧光定量检测技术是迄今为止定量最准确、重现性最好的定量方法,已得到世界公认。它广泛应用于基因表达研究、基因定型研究、核苷酸定量、基因突变筛选、转基因研究、药物疗效考核、病原体检测与鉴别等诸多领域 ,对兽医诊断学也具有十分重要的实际意义。
第六节 PCR 产物的定量检测与技术
一、 凝胶检测系统 
凝胶检测系统用凝胶扫描仪或计算机辅助视频设备对溴化乙锭染色的琼脂糖或聚丙烯酰胺凝胶进行定量, 放射性标记的扩增产物可通过放射自显影定量测定。最近,有用自动DNA 测序仪检测荧光标记的核酸, 这种方法可准确测量扩增产物的大小, 而且其检测灵敏度可达fg 水平, 但由于自动DNA 序列仪和荧光标记引物极为昂贵, 所以现在仅用于研究。
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二、 HPLC检测系统 
HPLC检测系统的优点为PCR 产物不用纯化,对未标记的产物灵敏度可达fg水平,对标记产物的检测限度可能更低。HPLC 能区分不同分子的大小,可允许我们使用不同大小的内标衡量扩增的效率。
三、 固相测定系统 
固相测定系统最常用的为96孔聚苯乙烯微量滴定板,可用仪器比色或读数。可用亲合素分子通过疏水相互作用包被滴定板,此固相系统可特异结合生物素或生物素化的分子可用于生物素化的PCR产物的定量, 如用生物素和地高辛双重标记的扩增产物可用微量滴定板法定量。将生物素和地高辛同时标记PCR 产物的方法有三种途径:①在反应混合物中同时加入地高辛和生物素标记的脱氧核苷酸类似物(DIG-/Bio-dU TP); ②加入生物素化的引物1和DIG-dUTP; ③加入生物素化引物2和地高辛标记的引物2。定量方法为: 双重标记的扩增产物用乙醇沉淀以去除未结合的标记物,然后加至亲合素包被的微量滴定板上温浴至少2小时,洗涤数次后,与DIG 抗体和AP结合物温浴,根据其底物不同可产生不同的颜色。亲合素介导的固相捕获生物素标记靶分子的技术是一个有效、灵敏和容易操作的技术,将成为定量PCR的一个关键技术。
四、 SPA系统 
SPA (Scintillation Proximity Assay) 系统用亲合素包被的氟微球作为固相载体, 用生物素标记引物, 在扩增时掺入氚化的核苷酸, 扩增完成后,加入已包被的氟微球以捕获生物素化的PCR 产物, 此捕获过程可使氚与氟微球紧密结合, 氟被氚激发产生光脉冲, 可用闪烁计数仪测量。与比色法相比,此法具有更大的线性范围。
五、 杂交检测系统 
将扩增产物变性后固定于尼龙膜表面, 与标记的DNA 探针杂交,亦可将序列特异的寡核苷酸探针通过多聚T(poly T ) 尾巴固定于膜上,与变性后的已标记的扩增产物杂交。在后者由于靶基因不是直接结合于膜表面, 故其反应动力学接近于液相, 反应速度快。通常使用生物素化的探针或扩增产物, 用亲合素2AP结合物产生颜色斑点,通过与已知浓度的标准比较颜色强度进行定量。
六、 电化学发光检测系统 
通过亲合素2生物素系统将扩增产物结合于磁性珠, 然后与2,2′-联吡啶-2钌螯合物(TBR )标记的探针杂交,加入三丙胺(tripropylamine,TPA )溶液,并转移至电化学发光仪的检测池,当电极的电压增加至一定水平时TPA和TBR都瞬时氧化,TPA氧化后生成一种不稳定的、具有高度还原性的中间物质,可与氧化的TBR反应,使之进入激发态,当由激发态变为基态时可发射出620nm的光。发光强度与TBR标记物的量成正比,通过发光强度对PCR产物定量。此法的敏感性很高,可自动化测量。
七、 DNA酶免疫测定系统 
通过抗DNA单克隆抗体与扩增产物结合, 再通过酶-第二抗体结合物进行定量测定。此法不需对引物和扩增产物进行标记, 但易出现交叉反应和单克隆抗体昂贵的费用限制了此法的广泛应用。
八、 激光诱导荧光检测法 
首先用荧光标记物FAM(商品名)的N-羟基琥珀酰亚胺酯衍生物借助氨己基连接臂偶联于正向引物的5′-核苷酸上,然后PCR扩增,用毛细管电泳扩增产物,最后用氩离子激光光源检测器检测荧光强度进行定量测定。此法的优点为样本用量少,可自动化检测, 快速、灵敏和高分辨率。
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第七节 目前存在的问题及展望
综上所述,定量PCR 技术的发展具有以下趋势:①从粗略定量、半定量到精确定量、绝对定量。②从单纯外参照非竞争性定量到内参照竞争性定量。③从扩增样品终点一次检测到扩增过程中动态连续检测进行定量。④检测方法也由手工、半自动发展到成套设备检测, 检测效率及自动化程度越来越高。定量PCR术的发展,是在不断克服其原有的缺陷,求得高度的灵敏性和较好的精确性的统一过程中发展、提高的。采用定量PCR技术对慢性病毒感染患者血中病毒荷载量进行测定,可用于抗病毒药物治疗的疗效预测和疗效观察。目前,已用于指导HIV、HBV、HCV 慢性感染的抗病毒治疗。
PCR技术在定量领域中的应用已逐渐由实验室中的探索发展成为理解复杂的生物本质的一项关键技术。目前,关于PCR能否精确定量的问题,正在进行激烈的争论。许多研究者趋向于将更多的精力投入新颖定量PCR方法的研究开发,使之进一步合理化,以增加试验的可信度。通过定量PCR涉及的所有过程的最终自动化,以消除重复性差的问题。毫无疑问,在不久的将来,定量PCR 技术将以其精确的定量,在分子生物学、实验医学,特别是在临床医学领域中得到实质性的应用。
尽管定量PCR 技术的发展促进了定量PCR 的准确性和可靠性, 然而PCR过程中任一因素的细微变化, 均要导致最终结果的巨大差异。另外, PCR反应前的提取方法的效率差异的存在,往往可引起最终定量的结果的显著变异,如果这些因素不能很好解决的话,进行真正意义的临床标本定量PCR的可信度将大打折扣。因此, 在进行定量PCR 研究中,我们在注意PCR过程标准化的同时, 应努力创造更加可靠的定量PCR技术。这不仅能积极推动定量PCR技术的发展,而且为正确判断疾病的发生、发展、预后提供有力的支持,为临床治疗中的量化以及临床治疗工作进入基因量化阶段提供帮助, 提高治疗的稳定性、可靠性、科学性,为最终揭示疾病的发生、发展过程提供一种科学量化指标。

(董 坚 杨 莹 魏双霞)

参 考 文 献
1  仝文斌,高巍,费然等.核酸扩增产物的量化酶免疫通用型检测方法.中华医学检验杂志,1999,22:83-86.
2  Helps C, Reeves N, Tasker S, et al. Use of real-time quantitative PCR to detect hlamydophila felis infection. J Clin Microbiol ,2001,39(7):2675-2676.
3  Kearns AM, Turner AJL, Eltringham GJA, et al. Rapid detection and quantification of CMV DNA in urine using LightCycler2based real-time PCR. J Clin Virol,2002,24 (122):131-134.
4  Harder TC, Hufnagel M, Zahn K, et al. New LightCycler PCR for rapid and sensitive quantification of parvovirus B19 DNA guides therapeutic decision-making in relapsing infections. J Clin Microbiol,2001,39 (12):4413-4419.
5  Bertsch T, Zimmer W, Casarin W, et al. Real2time PCR assay with fluorescent hybridization probes for rapid interleukin26 promoter genotyping. ClinChem,2001,47:1873-1874.
6  Loeb KR, Jerome KR, Goddard J, et al. High2th roughput quantitive analysis of hepatitis B virus DNA serum using the TaqM an fluo rogenic detection system. Hepato logy,2000,32 (3) : 626-629.
7  Germ i R, Grance JM , Garin D, et al. Q uantitative real2time RT-PCR to study hepatitis C virus binding onto mam2malian cells. Am Clin L ab, 2001,20 (7):26-28.
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8  Higuchi R, Fockler C, et al. Kinetic PCR analysis: real-time monitoring of DNA amplification reactions. Biotechnology, 1993,11(9): 1026-1030.
9  Nittre C T, Herrmann M G, Moss A A , et al. Continuous fluorescence monitoring of rapid cycle DNA amplification. Biotechniques,1997,22 (1):130 –138.
10  Germ i R, Grance JM , Garin D, et al. Q uantitative real-time RT-PCR to study hepatitis C virus binding onto mam-malian cells. Am Clin Lab, 2001,20 (7):26-28.
11  张华,徐叔祥.定量聚合酶链式反应的研究进展与临床应用.中华医学检验杂志,2000,23(2):120-1211.
12  Yajima T, Yagihashi A, Kameshima H , et al. Quantitative reverse transcription- PCR assay of the RNA component of human telomerase using the TaqMan fluorogenic detection system. Clinical Chemistry,1998,44(12):2441-2445.

第五章 其它相关PCR技术
第一节 逆转录—聚合酶链反应
一、 原理
逆转录—聚合酶链反应(Reversetranscription-polymerase chain reaction, RT-PCR)的基本原理是由mRNA逆转录产生的cDNA链作为模板进行PCR扩增。以RNA模板反转录(RT)为cDNA一链,再以cDNA一链复制出cDNA二链。分别以cDNA一、二链为模板,进行PCR扩增,通过电泳检测PCR产物,并定量分析以间接了解组织细胞中的mRNA的表达及含量。两步RT-PCR法可以使用oligo(dT)或随机引物引导cDNA第一链的合成。因此,可以从一个特定的样品中反转录出所有的mRNA的信息。此外,两步法可将反转录产物分别进行多重不同的PCR反应,因而可以从一个样品解答多个问题。一步法可使RT及PCR过程在单管和单一的缓冲液中完成。RT完成后不需要打开反应管、消除了不必要的加样过程,同时可避免污染。这种安排比RT及PCR分开的过程更方便。
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RT-PCR的特点是灵敏并且用途广,可用于检测产生的转录产物,确定某一基因转录物的存在与否,分析表达的水平;在无需构建和筛选cDNA文库时,克隆cDNA产物。
二、 实验方法
(一) 主要试剂
1.  细胞总RNA或mRNA
2.  10×逆转录缓冲液:0.5mol/L Tris-HCl,pH8.3,0.4mol/L KCl,70mmol/L MgCl2,10mmol/L DTT,1mg/ml BSA
3.  dNTPs
4.  随机引物,目的基因引物
5.  AMV逆转录酶
6.  RNA酶抑制剂
7.  Taq酶
(二) 操作步骤
1. 逆转录反应:20μl反应体系内,包括2μl细胞总RNA或mRNA,1U/μl AMV逆转录酶,50pmol随机引物,1 U/μlRNA酶抑制剂,500umol/L dNTPs,10×逆转录缓冲液2μl,5mmol/L MgCl2。42℃反应30min,95℃加热10min灭活逆转录酶,4℃保存。
2. 聚合酶链反应:50μl反应体系内,包括1.5 mol/L MgCl2,200 umol/L dNTPs,25pmol基因引物,Taq酶2U,1μg总RNA来源的cDNA模板。混匀后加50μl轻质石蜡油,在适当温度参数下扩增30-35循环。
3. 琼脂糖或聚丙烯酰胺凝胶电泳,紫外灯下观察结果或吸收光密度扫描。
(三) 优化RT-PCR反应
1. RNA模板
逆转录反应的成功有赖于作为模板的mRNA的完整性及纯度。操作时使用无菌的反应管、吸头、手套及DEPC处理过的水。当从核酸酶活性很高的样品中分离RNA时,建议使用核酸酶抑制剂(RNasin)。并常规或快速纯化RNA。无论是总RNA制备物、mRNA还是合成的RNA转录物,都应该是无DNA的。如果RNA制备物中含有微量的DNA,且与模板RNA具有相似序列时,反应体系就会产生该DNA的扩增产物。
使用RT-PCR扩增所需RNA的最小量取决于模板和引物两方面。一般情况下总RNA模板在10pg-1μg时,或poly(A)+ RNA模板在1pg-100ng时,均可得到很好的扩增效果。
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2. 对照反应
为了便于优化RT-PCR反应,处理常见问题,应设立阳性对照和阴性对照。阳性对照使用的是阳性对照RNA和上、下游对照引物。阴性对照是无菌的无核酸酶反应体系中RNA模板。
3. 核酸污染的避免
操作时应当心,以便使样品间交叉污染的可能性减少到最低程度,并且避免核酸(RNA和DNA)从一个反应遗留到另一个反应。扩增前后应使用不同的工作区域及加样器。操作时应戴手套并时常更换。使用灭菌技术来防止DNA遗留到后续的反应中。
4. 镁离子浓度
RT-PCR系统中反转录与DNA聚合酶所要求的Mg2+浓度受反应体系中核苷酸、寡核苷酸引物及模板终浓度的影响。每一实验均须依据目的mRNA引物的不同组合来确定Mg2+的最佳浓度。以滴定的方法确定Mg2+的浓度能够显著地改进敏感性、特异性及反转录和扩增产物的质量。
5. 引物设计
引物是决定PCR扩增片断长度、位置和结果的关键,它的设计尤为重要。RT-PCR引物的设计,首先应清楚所选择的组织特异性标志物的基因序列,识别出外显子与内含子的连接部位,使设计的引物能跨越外显子的断裂连接区。RT-PCR扩增产物的片段长度较基因组DNA扩增的短,因而能很容易地将污染的基因组DNA扩增产物区分开来。为增加检测的敏感性,须设计两对引物进行巢式RT-PCR扩增。巢式逆转录PCR技术(nested-RT-PCR)即先用外引物作第一次扩增,再用第一次扩增产物用内引物作第二次扩增。因为采用了二次PCR扩增,而且在第一次扩增基础上应用内引物再次扩增,所以增加了敏感性和特异性。
6. 温度
逆转录反应在适当的温度下进行,以便使RNA二级结构的形成减少到最低程度,有利于全长cDNA的合成。在逆转录反应之后,使杂交的RNA/cDNA变性,同时灭活AMV反转录酶,从而在使用耐热DNA聚合酶时能够得到高产量的扩增产物。
在决定PCR扩增循环的温度时,引物的序列是一个应主要考虑的因素。一个扩增循环一般包括三步:变性(94℃)、模板/引物退火(42-60℃)及延伸(68℃)。对于具有高解链温度(Tm)的引物而言,将退火和延伸温度升高是有利的。因为较高的温度可使模板与引物的非特异性结合减少到最低程度,从而提高特异性产物的产量。而对于低Tm值的引物而言,则有必要降低退火温度,从而使引物结合到目的模板上。
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7. 孵育时间及循环数
当孵育温度为37-48℃时,有效的第一条cDNA链的合成可在20-60min内完成。在第一条cDNA链合成之后,将反应体系于95℃温浴,使AMV逆转录酶失活,同时使杂交的RNA/cDNA变性。这一步骤直接导致第二条cDNA链的合成,进入PCR扩增阶段。大多数RNA样品经40个扩增循环后均可被检测到。如果目的RNA含量稀少或可供实验用样品材料量少,则有必要将循环数提高到45或50。在延伸过程中,每1kb长度的扩增引物大约需要1min进行延伸(最小延伸时间=1min)。最后的68℃、7min的延伸步骤将截短的扩增产物延长为全长扩增产物,从而可提高终产物的质量。
三、 常见问题处理
(一) 第一条cDNA链产物产量低或没得到
1.  RNA被降解
通过变性琼脂糖凝胶电泳检验RNA的完整性。确保试剂、加样器尖头及反应管均无RNA酶。在有核酸酶抑制剂存在的情况下分离RNA.
2.  AMV反转录酶高温灭活
如果在实验的开始加入了一个变性/退火步骤,则应确保在变性步骤及以后的42℃恒温之后再加入含有AMV逆转录酶的混合物。
3.  引物的特异性
核对“下游”引物是否与RNA下游序列相互补。
4.  引物退火
如果以寡聚(dT)作为“下游”引物,则应确认在反转录反应之前,用适当的温度进行退火反应。
5.  RNA纯化问题
一些RNA纯化过程中遗留的试剂(如SDS、NaCl、肝素、异硫氰酸胍)会干扰RT-PCR,影响目的RNA的质量。
(二) 扩增产物的分子量高于预期值
与模板RNA相关的基因组DNA污染了RNA制备物,使用无RNA酶的DNA酶消化污染的DNA。
(三) 扩增产物产量低或没有扩增产物
1.  循环数不够
将反应体系再进行5个循环
2.  热循环仪程序出现错误
检查设置的时间和温度是否正确
3.  热循环仪中的一些部位温度太低
设定一组阳性对照,用以确认在热循环仪的某些特定部位PCR产物的产量是否太低。
4.  反应条件不合适
降低退火温度和/或针对较长的扩增产物而延长延伸时间。
5.  遗漏反应体系中的组分
查对反应体系中的组分并重新进行反应。
6.  矿物油的问题
反应体系必须用高质量的、无核酸酶活性的轻质矿物油覆盖。不要使用经高压灭菌处理过矿物油。
7.  反应管未经高压灭菌处理
将反应管进行高压灭菌,去除抑制扩增的污染物。
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8.  引物设计不当
确认引物无自身互补或两条引物不互补, 检查PCR引物的长度及Tm。
9.  扩增产物产量低或没有扩增产物
引物的特异性错误:检查所设计的引物是否与正确的链互补。
反应条件不是最佳:优化Mg2+浓度、退火温度及延伸时间。确认两条引物浓度相同。
核苷酸降解:将核苷酸小量分装,冻存。快速融化,融化后置于冰上。避免反复冻融。
目的序列不在目的RNA上:重新设计实验,或尝试用其他来源的目的RNA。
10. 多个非特异性扩增产物
反应条件不是最佳:优化Mg2+浓度、退火温度。
引物设计不当:确认引物无自身互补,或两条引物不互补,尤其在近3,端。检查PCR引物的长度和Tm。避免在引物的3,端使用3个连续的G或C。
体系被另一目的RNA/DAN污染:加样时减少交叉污染。再扩增前和扩增后分别应用独立的操作区域和加样器。戴手套并经常更换。采用灭菌方法来防止DNA遗留到后续反应中。
目的RNA中含有多个目的序列:设计新引物。
(何永文)

参 考 文 献
1  迪芬巴赫,德维克斯勒著.黄培堂等译.PCR技术实验指南.北京:科学出版社,1998,第一版.
2  张维铭主编.现代分子生物学实验手册.北京:科学出版社,2003,第一版.
3  方福德,周吕.现代医学实验技巧全书.北京:北京医科大学中国协和医科大学联合出版社,1995,第一版.
4  谭骏等.基因工程原理及实验操作技术.北京:山东大学出版社,1994,第一版.
第二节 套式PCR
套式PCR(nested primers-polymerase chain reaction,NP-PCR)
一、 原理
套式PCR亦称为巢式PCR(nested-PCR)或嵌合PCR,通过设计“外侧”、“内侧”两对引物进行两次PCR扩增,外侧引物的互补序列在模板的外侧,内侧引物的互补序列在同一模板的外侧引物内侧。先用一对外侧引物扩增含有目的靶序列的较大的DNA片段,然后用另一对内侧引物以第一次PCR扩增产物(含有内侧引物扩增的靶序列)为模板扩增,使目的靶序列得到第二次扩增,从而获取目的靶序列。这样两次连续的放大,明显地提高了PCR检测的灵敏度,保证了产物的特异性。对于极其微量的靶序列,应用套式PCR技术可以获得满意的结果。
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根据两对引物设计的不同,又可以把套式PCR分为巢式PCR和半巢式PCR。如果一对内侧引物的互补序列是在一对外侧引物的内侧,称之为巢式PCR;如果内侧引物中的一条与外侧引物相同,而另一条在外侧引物内侧,则称之为半巢式PCR,半巢式PCR亦有很强的特异性。
二、 基本技术
(一)主要设备和仪器:
紫外分光光度计,高速离心机,PCR扩增仪,电泳仪,紫外检测凝胶分析仪等
(二)主要试剂
DNA提取试剂盒(或经典酚、氯仿、乙醇法提取DNA所需的饱和酚、氯仿、异戊醇、蛋白酶K、无水乙醇等试剂)、分子量标准(Markres)、PCR扩增试剂(引物、dNTPs、Taq DNA聚合酶等)、ddH2O(PH8.2)、液体石蜡、琼脂糖、溴乙锭(E、溴酚蓝等。
(三)操作方法
1. 样本采集及DNA提取:DNA提取可以用DNA提取试剂盒或实验室常用的一些DNA提取方法进行。
2. DNA定量:用紫外分光光度计进行DNA含量测定。
3. 引物的设计、合成:根据自己所要扩增的目的靶序列设计一对外侧引物和一对内侧引物,由生物公司合成。
4. PCR扩增
(1) 扩增体系:20μl或50μl,含有DNA模板、10×buffer、dNTPs、引物、Taq酶、液体石蜡、ddH2O(PH8.2,用于补足反应体积)。
(2) 扩增条件:根据所设计合成的引物及目的靶序列,设定扩增参数,两次PCR扩增的扩增条件相同。
(3) 两次PCR扩增:以外侧引物进行第一次PCR扩增,然后再以第一次的扩增产物作为模板,以内侧引物进行第二次PCR扩增。
5. 扩增产物的分析:
(1) Southern印迹杂交
取PCR扩增产物20μl,加样,电泳分离,然后用变性液和中和液进行处理后转膜;80℃烤膜2h,42℃预杂交30min,加入32P标记的相应的探针(20pmol)后42℃杂交过夜;第二天用1%SDS/PBS (PH7.2),42℃洗15min,0.5%SDS/PBS(PH77.2),42℃洗15min后将膜置X线暗盒内,放射自显影后观察,显影者为阳性,不显影者为阴性。
(2) 琼脂糖凝胶电泳分析
取5μl扩增产物与1μl溴酚蓝混合后加样,同时加样分子量标准(用以确定扩增片段大小),经2%琼脂糖凝胶(含0.5μg/mlE恒压(70-100V)电泳15-30min,紫外检测凝胶分析仪观察结果,出现荧光带者为阳性结果,阴性结果无条带,并摄像,记录分析结果。
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