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标题:甲基化检测方法(亚硫酸氢盐修饰后测序法)

finger[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 嘉年华 于 2011-8-31 15:56 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
教下楼主:
关于引物,我查的文献中有很多种不同的版本,实在不知该用哪一种。而且,这些引物在gene bank中都没比对到,是不是甲基化的引物就是跟正常的不一样,在库里比对不到啊?好急,谢谢啦!!!  ...

回答:甲基化PCR使用的引物中未甲基化的C一般转化为U,而DNA中没有U,即为T。下游引物因与序列互补,故而C对应的G变为了A。简言之,上游引物中非CG相连的C应为T,下游引物中非CG相连的C对应的为A。我觉得可以转化后比对一下。引物多,可选择被普遍使用的那一对更好些。
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mogu[使用道具]
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请教一下:我用Zymo的试剂盒进行的甲基化处理,作后经过测序效果都很好。最近我有几个模板经过处理以后,条件都没有发生改变,却无论如何也做不出来.而且为了排除试剂问题,我把引物,buffer, dNTP ,hotstar,统统都进行了更换,而且对初始DNA进行了纯化处理,可还是没有结果。我的引物的Tm值为60,片段约400bp.反应体系和反应程序如下:10*buffer 1ul, Q* buffer 2ul, MgCl2 0.6ul, dNTP0.2 ul,hotstar 0.1ul,primerF/R 0.5ul(100ng/ul) ,
template 3ul,终体积10ul.反应程序:95度,15分钟,
94度30秒,62度40秒(每个循环降落0.5度),72度1分钟,共12个循环。94度30秒,50度40秒,72度1分钟,28个循环。
请指导一下,我目前存在的问题在哪里?如何才能尽快扩出我的目的产物?
谢谢
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Darcy[使用道具]
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我想问一下楼主,有没有试过不用Clean up kit,直接纯化修饰后的DNA阿?有可行的方法吗?
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请教一下:我用Zymo的试剂盒进行的甲基化处理,作后经过测序效果都很好。最近我有几个模板经过处理以后,条件都没有发生改变,却无论如何也做不出来.而且为了排除试剂问题,我把引物,buffer, dNTP ,hotstar,统统都进行了更换,而且对初始DNA进行了纯化处理,可还是没有结果。我的引物的Tm值为60,片段约400bp.反应体系和反应程序如下:10*buffer 1ul, Q* buffer 2ul, MgCl2 0.6ul, dNTP0.2 ul,hotstar 0.1ul,primerF/R 0.5ul(100ng/ul) ,
template 3ul,终体积10ul.反应程序:95度,15分钟,
94度30秒,62度40秒(每个循环降落0.5度),72度1分钟,共12个循环。94度30秒,50度40秒,72度1分钟,28个循环。
请指导一下,我目前存在的问题在哪里?如何才能尽快扩出我的目的产物?
谢谢

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回答:原因不太好说。按照能做出的步骤每一步的对照一下,而不要急于更换试剂,更换试剂相当于条件的一次小变动。也不要轻易改变开始的PCR条件,否则容易陷入摸索条件的汪洋大海。我感觉如果不是初始进入修饰的DNA量太少、回收过程中丢失的太多,就是PCR步骤看似不起眼的小细节了,如PCR试管和PCR仪最好选用以前的,加样保证各成分的均匀、一致。
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finger[使用道具]
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我想问一下楼主,有没有试过不用Clean up kit,直接纯化修饰后的DNA阿?有可行的方法吗?

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回答:建议看一下《分子克隆》中的相关章节。
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红豆冰[使用道具]
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我用的是上海杰美的甲基化检测试剂盒。其基本步骤和春雨濛濛前辈发的帖子

上所描述的基本一样。现在所遇到的问题是,加入反应体系的DNA量约为3ug,加

入前经过琼脂糖凝胶电泳证实DNA量比较大,但是经过一系列反应和提纯后,最终

得到的20ul的经过修饰的DNA在琼脂糖凝胶电泳中没有任何条带(点了5ul),用

引物M和U扩增后,电泳没有目的条带。
需要补充的是:1.我修饰前的DNA是用试剂盒提的,用分光光度仪测提示蛋白

污染,但是在跑胶时显示条带很特异。2.刚经过16小时的修饰从水浴中拿出后,

立即用其中的5ul点样跑胶,没有任何条带(不知道这样做对不对,急疯了才这样

做的)。3.在用树脂吸附DNA这一步,用柱子分离丢弃的液体进行跑胶,没有任何

条带。4.加入无水乙醇,-20度沉淀6小时后,离心20分钟,看到似乎有片状沉淀

,乳白色,但加入溶解液却不溶。
那么,1.蛋白污染对修饰和DNA的回收影响大么?如果大要怎么进一步提纯?

2.我可能做了一些很可笑的事,但是DNA似乎在经过16小时的修饰后就消失了?3.

乙醇沉淀中的不溶于水的沉淀是什么?是糖元么?
求求各位前辈,给指条明路吧!!在下不胜感激!
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QUOTE:
原帖由 红豆冰 于 2011-8-31 16:00 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
我用的是上海杰美的甲基化检测试剂盒。其基本步骤和春雨濛濛前辈发的帖子

上所描述的基本一样。现在所遇到的问题是,加入反应体系的DNA量约为3ug,加

入前经过琼脂糖凝胶电泳证实DNA量比较大,但是经过一系列反应和提纯 ...

回答:试验总是面临着失败,慢慢锻炼一颗耐心吧。针对您的问题,就我所知回答一下:
1:去除蛋白污染可参考我在第一部分写的方法,即加入蛋白酶K ,终浓度可适当加大些。
2:我个人认为只要进入修饰的基因组DNA的量足够,修饰后是不会丢失的。主要的损失是在回收这一步。观看您的步骤,修饰16小时后不必跑电泳,况且当时是高盐状态不确定对电泳是否有影响。回收如果使用的是树脂,请一定注意修饰时亚硫酸氢盐的PH值,最终的PH值一定是5.0,不可以高,否则DNA与树脂的结合率会很低。另外在回收时可以不用TE缓冲液,使用预热到70度的灭菌双蒸水即可,因为洗脱液的PH也会影响洗脱的效率。
3:一般来讲加入的那些糖原能形成明显沉淀的可能性较小。如果这些不溶物经室温干燥后逐渐变得透明了应该是DNA了。
4:最后跑PCR没有结果除了DNA的问题外,我感觉还有很大的问题出在PCR这一步,包括反应体系、各种反应的温度、循环次数等。我在做MSP时也以失败告终,个人感觉与引物也不无关系。
总之,我感觉DNA修饰纯化注意了DNA的量、各种溶液正确的PH值,是不会有问题的。也请摸索一下PCR的条件。
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您好!想向楼主请教一下,做亚硫酸氢钠—PCR和亚硫酸氢钠-测序法所用的引物一样吗?如果不一样,测序法的引物该如何设计?我做的是结肠癌HT29细胞hTERT基因甲基化方面的,请帮忙设计一下,毕业在即,论文的实验还没完成,惭愧!
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赞!
我也这样觉得. 我所见过的protocol都要求不能超过2ug, 否则转化不完全(好象说和变性不完全有关,bisulfite倒是够用). 现在有不少的改进方法可以提高效率, 也有很多kit卖, 比较好的是zymo research和Qiagen的,个人感觉, 但是也不能完全follow别人的protocol.
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finger[使用道具]
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您好!想向楼主请教一下,做亚硫酸氢钠—PCR和亚硫酸氢钠-测序法所用的引物一样吗?如果不一样,测序法的引物该如何设计?我做的是结肠癌HT29细胞hTERT基因甲基化方面的,请帮忙设计一下,毕业在即,论文的实验还没完成,惭愧!

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回答:设计引物可采用: cuturl('http://www.ucsf.edu/urogene/methprimer/')
免费在线设计。不过引物的可行性需要实验方可验证。建议还是查找文献为主
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