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标题:甲基化检测方法(亚硫酸氢盐修饰后测序法)

我是一片云[使用道具]
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大家好,想请教各位老师一下,在NCBI中查到基因序列后,怎么样确定哪段是启动子,哪段是外显子啊,
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米米[使用道具]
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最近也在作MSP,用的ZYMO的甲基化试剂盒,PCR引物是参考文献的(所见文献几乎用的相同引物),其中一个基因甲基化和未甲基化引物均未P出东西,另外一个基因甲基化引物有条带,但未甲基化引物出现弥散带,提高退火温度也未分出特异性条带。有以下问题请教版主:
1、MSP出现弥散带是何原因,该如何进一步优化条件?
2、考虑其中一个基因已有结果,是否可以认为酶和DNA模板应该没有问题,而未PCR成功的基因该如何调整PCR条件呢?
3、MSP引物到底应该如何查对?实在是搞不懂这个东东,根本无法比对,文献也并未标出引物所对应序列的具体位置,头痛!
版主说:“甲基化PCR使用的引物中未甲基化的C一般转化为U,而DNA中没有U,即为T。下游引物因与序列互补,故而C对应的G变为了A。简言之,上游引物中非CG相连的C应为T,下游引物中非CG相连的C对应的为A。我觉得可以转化后比对一下。引物多,可选择被普遍使用的那一对更好些。”
我也不大明白,引物并未经过修饰怎么会有碱基的转化?按此比对也完全对不上啊,能否简单说明MSP引物与原序列的对应关系。万分感谢!  
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楼主:向你请教,我的模版用TAKARA的ExTaq酶做PCR是光板,但用别人的QIAGEN的酶,却可以做的出来。我看你发的帖子用的也是TAKARA的酶,所以想了解一下你的PCR体系,万分感谢!!!
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何去何从[使用道具]
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本人觉得用 promaga的柱子回收DNA效果远不如用 QIAGEN的 DNA纯化回收试剂盒效率高。QIAGEN的盒子是用到玻璃粉回收法。回收效率能达到80-90%  
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本人觉得用 promaga的柱子回收DNA效果远不如用 QIAGEN的 DNA纯化回收试剂盒效率高。QIAGEN的盒子是用到玻璃粉回收法。回收效率能达到80-90%

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很好的经验。
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楼主:向你请教,我的模版用TAKARA的ExTaq酶做PCR是光板,但用别人的QIAGEN的酶,却可以做的出来。我看你发的帖子用的也是TAKARA的酶,所以想了解一下你的PCR体系,万分感谢!!!

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回答:我的体系仅供参考。
修饰后DNA  2μl
10x LA buffer  2μl
2.5mM dNTP   1μl
10uM 引物
(上游+下游) 1 μl +1μl
LA Taq酶   0.3μl
DDW   12.7μl/共20ul。
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finger[使用道具]
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最近也在作MSP,用的ZYMO的甲基化试剂盒,PCR引物是参考文献的(所见文献几乎用的相同引物),其中一个基因甲基化和未甲基化引物均未P出东西,另外一个基因甲基化引物有条带,但未甲基化引物出现弥散带,提高退火温度也未分出特异性条带。有以下问题请教版主:
1、MSP出现弥散带是何原因,该如何进一步优化条件?
2、考虑其中一个基因已有结果,是否可以认为酶和DNA模板应该没有问题,而未PCR成功的基因该如何调整PCR条件呢?
3、MSP引物到底应该如何查对?实在是搞不懂这个东东,根本无法比对,文献也并未标出引物所对应序列的具体位置,头痛!
版主说:“甲基化PCR使用的引物中未甲基化的C一般转化为U,而DNA中没有U,即为T。下游引物因与序列互补,故而C对应的G变为了A。简言之,上游引物中非CG相连的C应为T,下游引物中非CG相连的C对应的为A。我觉得可以转化后比对一下。引物多,可选择被普遍使用的那一对更好些。”
我也不大明白,引物并未经过修饰怎么会有碱基的转化?按此比对也完全对不上啊,能否简单说明MSP引物与原序列的对应关系。万分感谢!

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回答:抛砖引玉谈一下引物比对的问题吧。我的办法比较原始。即:1文献中往往会提示目的片段的位置,根据其使用的Genbank号找到相应的基因序列。2:先看上游引物,因上游引物与原序列一致。引物中的T可能是T,也可能是C。尝试将T变为C,反复比对。需要一定的时间。3:可以根据目的片段的长短找到下游引物的位置,然后将原序列中的C变为T,与引物中的A匹配。这个办法比较简单。另一个比较复杂的办法:因下游引物序列与原序列是匹配关系。所以引物中A对应的碱基可能是T,也可能是C。因此,需要反复还原比对。
不知道是否还有更好的办法,因为没有自己设计引物,所以只好费些事研究别人的引物了。呵呵。
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大虾米[使用道具]
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您好!
我正在做人类基因SFRP1的甲基化测序检测:针对亚硫酸盐处理的DNA样本P出SFRP1 的第一个预测CPG岛,然后割胶回收,装载体测序.关键问题:p不出任何条带
能帮我分析一下引物吗?
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finger[使用道具]
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回复 #75 大虾米 的帖子

回答:引物应该没有问题。但我感觉您的目的片段有些长,因为修饰后DNA中TA比例增加,片段太长不是很好扩增,您的目的片段有600多个bP。多数文献扩增的片段都在200bp左右,较长片段多用巢式PCR分次扩增。建议:1:目的片段放短;2:做巢式PCR。
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章鱼小丸子[使用道具]
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楼主:你好!
有几个问题想请教。

欲做甲基化实验,本打算用参考文献中的引物,但发现文献中的RT-PCR引物有问题,因害怕甲基化引物也有问题,麻烦帮着看一下。
该基因为cyclind2,我查的有两个甲基化区,请看序列,[]内为甲基化区

AGAGCGAGCAGGGGAGAGCGAGACCAGTTTTAAGGGGAGGACCGGTGCGA
GTGAGGCAGCCCCGAGGCTCTGCTCGCCCACCACCCAATCCTCGCCTCCC
TTCTGCTCCACCTTCTCTCTCTGCCCTCACCTCTCCCCCGAAAACCCCCT
ATTTAGCCAAAGGAAGGAGGTCAGGGGAACGCTCTCCCCTCCCCTTCCAA
AAAACAAAAACAGAAAAACCTTTTTCCAGGCCGGGGAAAGCAGGAGG[GAG
AGGGGCCGCCGGGCTGGCCATGGAGCTGCTGTGCCACGAGGTGGACCCGG
TCCGCAGGGCCGTGCGGGACCGCAACCTGCTCCGAGACGACCGCGTCCTG
CAGAACCTGCTCACCATCGAGGAGCGCTACCTTCCGCAGTGCTCCTACTT
CAAGTGCGTGCA]GAAGGACATCCAACCCTACATGCGCAGAATGGTGGCCA
CCTGGATGCTGGAGgtaggtcggggggtggcgctcgccaggagccaggac
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aggcagaggggggaggaaaatctgggagaagcgaggctgtcctgggcggg
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cccacccccctcgcgacctgtcttttgcgaagccgccgcggctgcttgcg
ctgcggccaggaagagagtcggggcctgaaatcgggaccccgagtagaaa

另一个
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agcccatggaccccacctggagtagtgaggttccttggcactttaagaac
atccctcctttacttcacatttatttctactggaaactagcacagactta
tgcaagctaaattacgcatgttttctccgtaggatgctctatgtcctgtt
cctcttactaacaactctggtctggaccattgttctagGATTGTCTCAAA
GCTTGCCAGGAG[CAGATTGAGGCGGTGCTCCTCAATAGCCTGCAGCAGTA
CCGTCAGGACCAACGTGACGGATCCAAGTCGGAGGATGAACTGGACCAAG
CCAGCACCCCTACAGACGTGCGGGATATCGACCTGTGAGGATGCCAGTTG
GGCCGAAAGAGAGAGACGCGTCCAT]AATCTGGTCTCTTCTTCTTTCTGGT
TGTTTTTGTTCTTTGTGTTTTAGGGTGAAACTTAAAAAAAAAATTCTGCC
CCCACCTAGATCATATTTAAAGATCTTTTAGAAGTGAGAGAAAAAGGTCC
TACGAAAACGGAATAATAAAAAGCATTTGGTGCCTATTTGAAGTACAGCA
TAAGGGAATCCCTTGTATATGCGAACAGTTATTGTTTGATTATGTAAAAG
TAATAGTAAAATGCTTACAGGAAAACCTGCAGAGTAGTTAGAGAATATGT
ATGCCTGCAATATGGGAACAAATTAGAGGAGACTTTTTTTTTTCATGTTA
TGAGCTAGCACATACACCCCCTTGTAGTATAATTTCAAGGAACTGTGTAC
GCCATTTATGGCATGATTAGATTGCAAAGCAATGAACTCAAGAAGGAATT
GAAATAAGGAGGGACATGATGGGGAAGGAGTACAAAACAATCTCTCAACA
TGATTGAACCATTTGGGATGGAGAAGCACCTTTGCTCTCAGCCACCTGTT
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