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标题:【转帖】MTT实验两年心得

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CCK-8目前的单空成本已经下降到每板1元左右,我听说的,我还没做过,所以不能给你提供详细信息。可以问问一些规模较大的细胞生物学试剂供应商
CCK-8这个化合物好像是日本人发明的,佩服日本人的敬业精神,这个化合物与MTT不一样(MTT检测是一次性的,测完后细胞就不存在了),检测过的细胞还是活的,换液后可以继续研究,这恐怕就是它的最大优势,当然要注意无菌操作。
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加MTT孵育4小时后,溶液颜色没有发生太大变化,为黄色。
我想请问一下,你的MTT是用无血清培养基配的吗?因为我有一次就是加错了,用正常的含血清培养基配了,结果颜色就不对了,干扰了MTT的检测。
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MTT为淡黄色,用0.1 M的PBS配制,浓度为5mg/ml,配好后直接取20 ul加入到完全培养的细胞孔中(总体积在200 ul左右,MTT的体积占总体积10%)就行了。不要用培养基配制,更不要加血清,因为MTT的稳定性不太好,溶液越复杂,就可能导致MTT越不稳定。
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辛苦搂主了,我也做了很长时间的MTT实验,一直用的是570nm,和您说的波长所测值会有很大差异马?
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如果酶标仪用的是滤光片,那就没啥选择性。570nm的吸收也是挺高的。波长不同吸光度会有差异,但不影响检测结果的趋势变化。如果你用的酶标仪有单波长(三棱镜或光栅衍射产生的),那么选用最大吸收波长有利于减少非特异性吸收所导致的误差。
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qqq111[使用道具]
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楼主辛苦了,我在的实验室做MTT实验所用的波长是双波,630和470 ,实验室的酶标仪没有570,不知单波和 双波有何区别?
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单波长也是可以用的。双波长主要可以扣除非特异性吸收,比如细胞颗粒造成的吸收和板孔背景导致的非均一性吸收。如果使用96孔板前先检测板孔的背景吸收在0.05以下,或高于0.05的孔标记好不用,单波长也能大体扣除因此造成的非特异吸收。对于细胞造成的非特异吸收,细胞数越多,这方面的吸收也越高,对结果判断的方向性不会有太大影响。
下图A是氧化型MTT的吸收曲线,B图是还原型的MTT吸收曲线,对于你的酶标仪建议使用470 nm.


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以下是B图


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mickeylin[使用道具]
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MTT用PBS配制,原先培养基中10%FBS会影响结果吗?
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不会,因为上清会弃去,每一个孔中都平行有10%FBS,即使有影响,其影响的大小也是可以通过阴性对照扣除掉。
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