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标题:【转帖】MTT实验两年心得

yizhi[使用道具]
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我一直在想一个问题,为什么网上见的protocol绝大部分都是MTT加10~20ul,然后放3~4h再测?是为了节省试剂?我想在某种程度上时间可能更重要些,但为什么不增加MTT的量,减少孵育时间呢?
从我的实验来看,增加MTT、降低孵育时间是可行的。但是现在也存在一个问题,就是即使用到5000/well,现在不加药的孔的OD也能到1.5甚至2以上。是否有MTT增加的原因?这个还在进行验证。
希望有我这种实验经历和想法的同行一起讨论。
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whitesheep[使用道具]
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22
 
我的MTT是用PBS配的,5mg/ml,因为每孔的溶液量为100ul,所以我加了10ul。
现在我的调零孔孵育4小时后为黄色,但是加入DMSO之后,还是红色的,490nm下的吸收值为0.2左右。难道是我买的培养基或是血清有问题,我用的是GIBCO的1640培养基,杭州四季青的血清。
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鲇鱼少爷[使用道具]
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23
 
你提的这个问题很好,值得探索。但是目前都是约定加入10%体积的MTT,然后反应3-4h。我个人猜想可能与以下原因有关(纯属猜测,因为没做过实验):
1、根据我的经验,MTT的溶解度不是太好,所以0.5%的MTT母液(相当于10X)已经可能接近最大溶解极限,而直接用含血清的培养液配制因为带入的成分复杂,MTT保存的稳定性可能存在疑问。所以使用孵育3-4h的条件。
2、MTT是琥珀酸脱氢酶的人工底物,底物浓度过高可能导致酶抑制,当然,MTT是否有此作用值得实验验证,但大多数酶的底物浓度过高时会产生酶的抑制作用(直接的抑制作用)。
不知以上猜测是否合适,请大家探讨。
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鲇鱼少爷[使用道具]
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1、MTT温孵4h可能会发生自发的氧化还原作用而产生颜色。因为你是和培养基血清一起孵育的,你的空白孔470nm吸收在0.2左右,因该说是预期值,要减少它,在你的条件下只能靠减少反应时间。但是要注意你的“有细胞但不加药的孔”吸光度是多少,如果吸光度小,比如低于0.8,那么建议你增加细胞浓度。
2、尽量不要用延长反应时间来增加吸光度,因为MTT会自发转化,尤其是有血清的帮助下(血清中含有NADH、Fe3+等物质,这些物质能促进MTT转化),通过增加细胞数减少反应时间来提高检测孔和空白孔的相对差值是可行的,而通过增加反应时间可能很难凑效。这一点许多书上没说。
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youyou99[使用道具]
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25
 
楼主辛苦了
正准备做CCK-8实验,不知楼主是否知道哪个公司的CCK-8价格低些?多谢!

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cuturl('http://www.dojindo.cn/productd.asp?pd=82')
去这个网址看看,也许对你有些帮助,如果还有什么需要的话,比如相关文献之类的可以找我。
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woshi[使用道具]
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26
 
谢谢你的解答。
我现在还有一个问题是,药物最高浓度的OD值要比调零孔低,所以如果减去调零孔的话,就成负值了,这样的话肯定不行吧,而且我做过很多次,都是出现这种现象。不知你的调零孔的吸收值一般在多少?我的对照孔的细胞在培养48h后测的值为0.5左右(490nm)。我曾经做过比较,加血清的孔和不加血清的孔测出的值虽然有区别,但不大,而且吸收值都比较高。
昨天我的一个师姐说别人做mtt时,有六个复孔,如果其中有三个复孔比较接近(它们之间的差值一般在0.001-0.007之间),就取这三个值,其它的就不用了。不知这样可否。差值多少为好,我感觉她说的这个差值对我来说,很难让六个复孔或是5个复孔有这么小的差值。而且周围的孔,加了PBS的,测出的值一般情况下在0.04左右。
另外一个问题是,接种细胞,我感觉比较难,真的很难保证每个孔之间种的细胞很一致。我们的做法是消化细胞,数细胞,然后在50ml的离心管中配成5×104cells/ml,每孔加100ul,我是S型种板子,加10个孔吹打细胞悬液。我现在想问一下加多少个孔吹打,吹打多少次可以将细胞吹匀,而且用枪吸的时候,枪头在离心管内吸的位置(他们说每次吸的时候枪头最好在离心管的最底部,这样每次吸的细胞差异就小了)。
谈一下你的经验吧。谢谢。
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dhpbj[使用道具]
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我的MTT是用细胞培养用的PBS配制的,并且加MTT前去除培养基,所以不存在引入过多其他成分的问题。不过我将在下周检测一下,尽量把这几个条件都检测一遍,看对结果有什么影响。希望能有个结论。
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duchy[使用道具]
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讲的太好了!
我是初次做MTT法测肝细胞活力,目的是要从一种药物的不同浓度中筛选出对肝细胞的损害程度最佳的浓度,现在还没搞懂这个最佳浓度怎么选,请问你懂这方面吗?! 谢谢
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woshi[使用道具]
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你出去培养基后是否在加入同体积的PBS。我曾经试过,把培养基吸出,然后加同体积的PBS,再加入MTT,测出的值要比有培养基可孔的值低,当时好像能低0.2左右(490nm)。
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ldh[使用道具]
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我的做法是:去除培养基后,直接加用PBS稀释的MTT(MTT母液也是用PBS配制的)200微升,放置1h再加200微升的DMSO。
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