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标题:请各位大侠看看我提的RNA,能做RT吗?

豆荚[使用道具]
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在这里推荐一种简单的RNA电泳鉴定法,采用1*TAE的1%普通琼脂糖电泳效果也很好,只要不是做NORTHERN,可以省却许多麻烦,有兴趣的可以试一下

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胶里什么其他的东西都不加吗?这样不担心RNA会降解吗?请指教。
如果这样真有效果我倒想试一试。
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dior[使用道具]
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我想你可以考虑一下再次提纯,纯化出纯度高的MRAN,你看呢?
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微笑的海豚[使用道具]
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做rt的rna有如下要求:
18S和28S要清晰,且后者比前者亮.我感觉你的rna 不是很好,建议重提
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大虾米[使用道具]
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可以做,但你1、3孔好像有大分子物,象DNA。
我觉得你的RNA跑的挺好的。
试试吧。
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橘子水儿[使用道具]
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不错,你的实验结果挺好,可以继续。:)
我提了RNA,鉴定也走电泳,1%普通胶,60-70V,10分钟左右观察。降解不明显。
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金手指[使用道具]
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我建议不要做电泳的,因为你如果做得是rt-pcr,只需要用紫外分光度计测出rna的质量就可以了,这样决定了是否需要重新提取。。。。。。
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我认为降解的问题还在其次,在加样孔有DNA带,好像有DNA污染,如果你接下来做RT-PCR的话,就有问题了,到底是RT后的cDNA的扩增,还是基因组DNA的扩增呢?所以有必要加DNA酶处理,消除DNA。  
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阿拉蕾[使用道具]
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楼上很多同仁已就你的问题提出了宝贵的分析意见和建议,我看了你的RNA电泳图谱,有以下建议,供你参考:
通过你的RNA电泳图谱,可以看出你提的RNA稍有些降解,如果你的试验对RNA要求不高,扩增的基因表达丰度很高,是完全可以用的.
RNA提的好坏,基本标准:OD260/280比值1.8-2.0,2.0质量最高.电泳图谱28S和18S带清楚,比值为2:1,如28S和18S的比值越小,说明RNA的降解程度越大,如28S和18S带消失,则意味着RNA完全降解,一定要弃之勿用,避免浪费.用1%普通胶,120-150v电用即可观察RNA的完整性情况,不一定非得使用1%甲醛变形琼脂糖凝胶电泳.
总之,高质量的RNA(完整性和纯度)是开展与RNA相关研究的前提和基础,一定要提好RNA!
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上很多同仁已就你的问题提出了宝贵的分析意见和建议,我看了你的RNA电泳图谱,有以下建议,供你参考:
通过你的RNA电泳图谱,可以看出你提的RNA稍有些降解,如果你的试验对RNA要求不高,扩增的基因表达丰度很高,是完全可以用的.
RNA提的好坏,基本标准:OD260/280比值1.8-2.0,2.0质量最高.电泳图谱28S和18S带清楚,比值为2:1,如28S和18S的比值越小,说明RNA的降解程度越大,如28S和18S带消失,则意味着RNA完全降解,一定要弃之勿用,避免浪费.用1%普通胶,120-150v电用即可观察RNA的完整性情况,不一定非得使用1%甲醛变形琼脂糖凝胶电泳.
总之,高质量的RNA(完整性和纯度)是开展与RNA相关研究的前提和基础,一定要提好RNA!

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解释的很清楚阿,我们平常提RNA之后也是跑普通胶,但是无论是普通还是变性,电泳肯定是必须的.
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回眸[使用道具]
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从该图看,28S和18S均清晰,RNA的质量应该是可以的对于提取的RNA一般需要鉴定质量和纯度这是必须的,虽然电泳比较烦琐
1.紫外分光光度计下记录,OD260/280比值,如果在1.6-1.8,说明RNA质量可以,同时可以对RNA定量,知道提取到的RNA量,这对于进行定量分析很重要
2.此外还需要通过电泳鉴定RNA的完整性,分子克隆推荐的方法是1%甲醛变形琼脂糖凝胶电泳,若28S和18S清楚,比值为2:1,则表示RNA完整,降解的RNA电泳中28S和18S条带消失,且主要的片段集中在18S的前方.在这里推荐一种简单的RNA电泳鉴定法,采用0.5*TAE的1%普通琼脂糖电泳(同常规凝胶)在1*TAE电泳液中电泳效果也很好,只要不是做NORTHERN,可以省却许多麻烦,有兴趣的可以试一下
3.在下面的鉴定就是你的RT-PCR了,如果扩增阳性,那就不用担心拉.

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请问您提到的0.5*TAE和1*TAE是什么意思,与跑dna 的TAE有何区别?

另外我最近做RT-PCR碰到的困难是:我早上造大鼠脑缺血模型,过12小时也就是晚上十点左右必须取材,我只能将取下的海马和皮层加入裂解液匀浆后
放到负70度冰箱,第二天早上来提RNA。紫外分光光度计下记录,OD260/280比值,只有1.4-1.5,甚至会出现1.3-1.4。但浓度还行300-500ng/微升。

放在冰箱里是不是有影响,我应该注意些什么。

比值低但是浓度高,提示什么,这样的样本能做RT-PCR吗?

恳请指教!!!
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