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标题:提RNA过程影响纯度和质量的关键是否在TRIZOL和氯仿这两步?

绵绵[使用道具]
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给大家介绍用molecular research center 的TRI系列,比invitrogen的好的多,据说invitrogen是向它买的
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知了知了[使用道具]
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有时,提取一瓶细胞的RNA,用2ml Trizol,然后分2个EP管,同时做,但只有一管做出来,操作都是一样的,不知为什么.
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森林木[使用道具]
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兄弟我最近在做有关脾脏组织的RT-PCR,在提取RNA的过程中几乎试遍了所有的RNA提取试剂,有一些经验与大家分享,脾脏组织的RNA提取采用TRIPURE最好,结果稳定,比值一般都在1.9-2.0左右,RNA电泳三条带清晰,而且即使5S带较亮不会影响PCR结果。脾脏组织在匀浆的时候很麻烦,一定要匀浆完毕后液体不能起丝(即匀浆棒取出时看不到明显的粘丝状),我也曾试过用超声细胞破碎仪进行匀浆效果不好,感觉RNA都被打断了,RNA电泳时只有5S带。我感觉RNA提取的关键在于匀浆这一步,其它步骤按说明书即可,最后的75%酒精洗涤最好2次。
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蓝蜗牛[使用道具]
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各位高手,有没有提取胰腺rna成功的,介绍一下经验,我都做三个月了,每次提取出来的都是一条降解带带,od值在1.5左右,今天下午我换肝组织试了一下,出来的rna三条带非常清楚,应该说明我的试剂、手法没什么问题吧,可为什么换了胰腺就提不出来呢,超级郁闷,再这样下去我快熬死了!
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mamamiya[使用道具]
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最近也抽提了一次肾系膜细胞RNA,但是以失败告终!
把我失败的教训说一下哈:
细胞数量太少!我用的是5cm*2的培养皿,先用胰酶消化细胞,PBS终止消化,离心,再用PBS吹打,离心。弃上请,加入1mlTRIZOL,吹打一分钟。然后放入-80保存过夜。(因为时间关系,第二天中午接着做的),加入氯仿0.2ml,混匀,室温放置三分钟,四度离心,转移上层水相,加入等体积的异丙醇,离心,再加入75%的乙醇,离心。发现没有白色沉淀!
指导老师说是因为细胞数太少了,各位大侠有什么高见,请指导一下吧!
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笔笔[使用道具]
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提了几次RNA,都遇到同一个现象。用75%酒精洗涤时,白色沉淀全部溶解,怎么离心也见不到了。最后离心十分钟,仅剩一点液体。加20ulte后跑电泳,可见三条带。od260是0.020,280是0.140。可以做rt吗?稀释倍数是1000倍  
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微笑的海豚[使用道具]
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提了几次RNA,都遇到同一个现象。用75%酒精洗涤时,白色沉淀全部溶解,怎么离心也见不到了。最后离心十分钟,仅剩一点液体。加20ulte后跑电泳,可见三条带。od260是0.020,280是0.140。可以做rt吗?稀释倍数是1000倍

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0.02/0.14?od260是0.20吧!如果是应该可以做!
一般来说加入75%酒精时我遇到过两种情况:1.RNA沉淀不溶解,吹打后仍然见到小碎片。这种情况一般OD值都很好1.8-2.0,而且RNA浓度很高,一般有50ug以上。RT-PCR也没问题。2.RNA沉淀在加入75%酒精后沉淀肉眼不可见,这种情况下,实验的结果很不稳定。个人认为还是肉眼可见沉淀较好!

另外我认为加入TRIzol的量很重要,一般做细胞的抽提,细胞数不需要10*7,也很难有这么多!所以TRIzol我只加0.75ml,氯仿相应减少为0.15ml效果很好!加入氯仿之前室温静置就可以。异丙醇和75%酒精一定要预先冷冻处理!祝大家好运!
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笔笔[使用道具]
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我做od时稀释倍数是1000倍,这样算下来总的rna量在16ug。细胞数用了铺满的19cm的培养瓶。电泳发现加样孔有红色荧光。说明有DNA污染。操作时很小 心的。怎么避免呢?
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