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标题:【求助】A260/A280的Ratio低与DEPC水有关么?

小螺号[使用道具]
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【求助】A260/A280的Ratio低与DEPC水有关么?

我在做RNA提取时A260/A280的Ratio总是徘徊在1.4左右,反复找原因后发现在其他操作及条件均相同的情况下,DEPC水不同得出的Ratio也不同。
问题是:用买的两家公司的DEPC水和自己配制的DEPC水都得不到理想结果,只有用以前一位前辈用过的分装后未注明来源且所剩无几的DEPC水可以得到理想结果!!!
郁闷死我了!哪位前辈可以给我指点迷津呀?请帮帮我!!
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8princess8[使用道具]
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消毒不严格吧?
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A260/A280的Ratio低说明提取的RNA纯度低
加氯仿后离心的转数跟时间够不够?
还有很重要的一点就是:离心之后吸上清,中间有一层白白的东西,那一层一点点都不能吸,宁愿上清少吸一点也不能把那层吸进去了,一吸,纯度就降了。
我以前也是把上清吸得很干净,把中间那一层都吸了。纯度一直都上不去,后来同学跟我说过不能吸中间那一层之后,纯度就都很高了~
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8princess8[使用道具]
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我的一个老师说RNA使用TE Buffer稀释后再进行吸光度值的测定会比较高,(我没试过,都是用DEPC水溶解和测量的) 如果用DEPC水来溶解测量,相对稍低一些,但也不至于象楼主那样1.4左右,楼主是使用得试剂盒吗?我用试剂盒提取的一般在1.7~1.9,常在1.8多,有时候还会高于2.0,但是对实验结果影响不大,如果不用试剂盒,1.3多也是有可能的,我也曾经作出过结果。一般来说,低离子强度或低pH值会使OD280值升高,估计是楼主的DEPC水出了问题吧。
另外一个原因就是样品裂解时加入的试剂量偏少,或者组织块偏大,造成蛋白变性不充分,可以再次对RNA溶液进行苯酚/氯仿抽提,以除去蛋白。
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谢谢大家的宝贵意见!太感谢了!
我用的不是试剂盒提取,样品裂解时50mg左右的组织加入1mlISOGEN,不知道这个量是不是可以?
homogenize后加0.2mlchloroform,12000rpm,15min,4℃,不知道这样的设置转速和时间是不是够?
吸取上清时为避免吸取中间层我用166ulpipette吸取三次,第三次时只是看上清残余情况取适量,这样应该可以排除中间层影响的可能性了吧?
如果真的是EDPC水出了问题的话我该采取什么措施呢?
请高手指教!
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50~100mg左右的组织加入1mlISOGEN都没有大问题。
homogenize后加0.2mlchloroform,12000rpm,15min,4℃还可以,只是楼主加入chloroform有没有剧烈震荡啊?这一步的剧烈振荡十分关键的,不然就可能有蛋白。
吸取上清注意了应该问题不大。
DEPC水换一个公司的试试。测OD值用的时候换新配制的试试。
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我在做RNA提取时A260/A280的Ratio总是徘徊在1.4左右,反复找原因后发现在其他操作及条件均相同的情况下,DEPC水不同得出的Ratio也不同。
问题是:用买的两家公司的DEPC水和自己配制的DEPC水都得不到理想结果,只有用以前一位前辈用过的分装后未注明来源且所剩无几的DEPC水可以得到理想结果!!!
郁闷死我了!哪位前辈可以给我指点迷津呀?请帮帮我!!!
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这个应该不是拫重要,比值只是一个参考,我们实验室(科技部的一个重点实验室)在做反转的时候,一般不怎么考虑A260/A280的比值.若果,你后面的实验要求很高,如建文库什么之类的话,那就要考虑这个值了!希望能对你有用.
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260/280值低说明蛋白含量高,有可能是离心后取上清的时候不小心吸到的中间的蛋白层.可以在提取后做PCI抽提,乙醇精制来除去蛋白.
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我在补充一下,还有一种可能的原因是,在测量OD的时候,调零和稀释RNA的溶液应该用TE,用DEPC确实是会使260/280高,你以前用的剩一点的DEPC可能是偏碱性,这样所受的影响比较小,但是绝对没有用TE的好.
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小螺号[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 101010 于 2016-4-9 10:35 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
我在补充一下,还有一种可能的原因是,在测量OD的时候,调零和稀释RNA的溶液应该用TE,用DEPC确实是会使260/280高,你以前用的剩一点的DEPC可能是偏碱性,这样所受的影响比较小,但是绝对没有用TE的好. ...

谢谢您的意见!
不好意思,我是新手,对相关的词汇都还没弄很明白,请问一下:TE是指?
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