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标题:【求助】A260/A280的Ratio低与DEPC水有关么?

小螺号[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 831226 于 2016-4-9 10:33 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
50~100mg左右的组织加入1mlISOGEN都没有大问题。
homogenize后加0.2mlchloroform,12000rpm,15min,4℃还可以,只是楼主加入chloroform有没有剧烈震荡啊?这一步的剧烈振荡十分关键的,不然就可能有蛋白。
吸取上清注意了应该 ...

谢谢您的意见!
第一次做实验时,加入chloroform后确实没有震荡,结果chloroform都很安静地躺在下层,一点儿作用都没起,没办法又重新震荡离心了一遍,幸亏用的是练习用的sample。呵呵,现在回想起来还觉得挺好笑的。也感觉做实验确实能体会到失败是成功之母这样的道理。只是希望借助大家的帮助我能够顺利从这一步的失败中走出来。
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65urh[使用道具]
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不好意思,我是新手,对相关的词汇都还没弄很明白,请问一下:TE是指?

======================================

TE就是TE buffer,TE缓冲液。祝实验成功!
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45778[使用道具]
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OD260/280 在提取组织RNA,进行RT-PCR等类似实验操作中,仅仅是个参考,只要确认自己的实验操作无误,比值1.3多也能RT成功,PCR做出很漂亮的条带来
OD值受很多因素影响,它的比值不如参考书上的那么标准,并不能完全代表你的实验结果不好
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8princess8[使用道具]
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OD260/280 在提取组织RNA,进行RT-PCR等类似实验操作中,仅仅是个参考,只要确认自己的实验操作无误,比值1.3多也能RT成功,PCR做出很漂亮的条带来
OD值受很多因素影响,它的比值不如参考书上的那么标准,并不能完全代表你的实验结果不好
......

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谢谢您的意见!
我在看到OD260/280比值不理想后就停在这里了,一直反复找原因,重复试验,确实没再往下进行过。或许我该先做到最后试试看。呵呵,谢谢了
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我提的PNAOD 值一直都比较高 ,多数在2.0-2.1之间, 太高了也不好吧?我是拿DEPC水融RNA的, 也用来调零
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我用比值为1.2的来做RT 也能做出来 所以我认为比值关系应该不大 不用太在意 做出来就可以了
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今天也做了第一次
浪费了好多试剂和时间,幸好最后还是有点结果:反转录的cDNA可以扩出阳性片段,目的片段却没出来
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可能跟DEPC水的灭菌有关吧
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u234[使用道具]
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核酸样品的A260/A280值一般在1.7~1.9是比较合适,偏离这个值可能是由于蛋白含量偏高(A260/A280值大于2.0)、DNA样品中有RNA污染(比值小于1.7)、RNA中有机物如氯仿等污染(比值小于1.7)造成。值得注意的是:当样品中的脂肪含量较高,而使用的抽提方法又没有特别注意这一点时,比值也会偏低。DEPC水有影响,但不是根本性的问题。RNA的质量及浓度以在胶上鉴定为使用前的最终标准,以rRNA条带尖锐(sharp)且28S的亮度是18S的亮度的2倍以上为好。另外,不同组织、不同的RNA提取方法所得RNA跑胶时rRNA的条带数可能并不仅仅是28S和18S这2条,可能还有较大的条带,但与DNA的污染又明显不同,它们与点样孔的距离较远。一般来说,这样的RNA样品可能质量更好。
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8princess8[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 u234 于 2016-4-9 10:40 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
核酸样品的A260/A280值一般在1.7~1.9是比较合适,偏离这个值可能是由于蛋白含量偏高(A260/A280值大于2.0)、DNA样品中有RNA污染(比值小于1.7)、RNA中有机物如氯仿等污染(比值小于1.7)造成。值得注意的是:当样品中的脂肪含量 ...

到底是A260/A280值大于2.0有蛋白质污染还是有核算污染
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