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标题:[讨论帖]巨噬细胞RAW264.7的经验总结

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我们这边消化是用冷的含0.05%EDTA的PBS,消化2分钟左右,很容易消化下来,状态也很稳定,只是传代时吹打力度要轻柔,机械力也会对细胞产生影响,导致触角。

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的确,PBS洗一洗,消化一下就很轻松的吹下来了。
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我们这边消化是用冷的含0.05%EDTA的PBS,消化2分钟左右,很容易消化下来,状态也很稳定,只是传代时吹打力度要轻柔,机械力也会对细胞产生影响,导致触角。

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的确,PBS洗一洗,消化一下就很轻松的吹下来了。
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现在很迷茫了,到底是刮刀好,还是消化好?

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你自己亲自试试,对比一下试验结果不就知道了。用得着在这郁闷么?实验要亲自做啊。
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在论坛看到很多筒子养过RAW264.7,我现在在用脂多糖诱导RAW264.7建立细胞炎症模型,然后用ELISA测细胞分泌的前列腺素E2.现在出了点问题,我做ELISA时标曲的显色很正常,可是我的样品几乎都没有颜色。。。以下是我的细胞培养步骤
小鼠巨噬细胞按细胞浓度为100000 个/mL接种到24孔板,待生长密度为60%时更换为无血清培养基进行同步化;待密度为80%时换液,并分为如下两个组别:对照组(只加培养基),脂多糖组(浓度为10μg/mL),于37℃下5%CO2培养24h,实验结束后取上清3000r/min离心5min,取上清进行测定(即取即测)。我用的培养基是DMEM高糖培养基,有酚红。因为不检测COX酶活性,所以没加花生四烯酸(也试过加,同样没有显色。。。)
相向各位大虾请教,究竟是我的培养过程出了问题,还是试剂盒有问题?脂多糖的诱导应该是成功的,因为同时做的一氧化氮检测显示脂多糖组一氧化氮的浓度很高。。。

现在实验卡住,又要找工作,实在是不知道如何解决啊 请各位指教。。。

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不要着急,哥们,这个我也出现过。建议你更换试剂盒,我用的是罗氏的试剂盒,进口的。
还有可能就是你把细胞一定要培养好做实验。结果比较灵敏。
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我的RAW264.7消化两个小时都不会掉下来,现在我都加三毫升胰酶消化15-20min,然后直接用那三毫升胰酶来吹打细胞,就算这样还是很难吹

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1,你吹打的工具不行,力度不够。
2,你的胰酶不行。
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回复 #78 kent 的帖子

是啊,我换了试剂盒又做了两次,结果很很好啊。就是那个试剂盒的问题。
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纠正一下,确实是很好养的,我养其它的细胞做实验一难的不能做的时候,就那这个来玩玩,信心立马倍增啊,然后就所向披靡了。哈哈。这个Raw264.7是我的福将来的。呵呵。
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唉给个破烂试剂盒拖了进度,新换的还是这样就杯具了,贪便宜的下场,唉

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检测PGE2我就遇到一次不好的,就是试剂盒有问题,换了就好了。
但是我做PLA2的活性检测就遇到了怎么都检测不出来,最后换成了检测它的量。。。最后发现活性检测的试剂盒过期啦,哇靠,气炸我了。真想@#@#@#@#!
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话说还要注意你的试剂盒的种属来源问题,上一次我做的是鼠的PGE2检测,结果发现那个公司给我的试剂盒是Human。怪不得我做不出来。。。
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养了一年RAW了
有2点体会:
第一,这细胞比较奇怪,不用胰酶的话很容易就能吹下来,但是一旦加了胰酶反而会贴得很牢,不容易吹打
第二,这细胞对环境比较敏感,很容易伸出伪足,同时各细胞因子指标也出现变化,这一点比较让人头痛
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