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标题:[分享帖]流式图片专区

了了[使用道具]
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流式细胞仪当然可以检测细胞内蛋白,这一点,并不是很难,当然要比检测细胞表面抗原复杂些,好在都已经有现成的方法,不成问题。
不过流式的应用原理主要还是抗原和抗体反应和western、免疫组化没有本质差别,但是由于免疫组化和western都有酶催化底物的放大体系,因此,流式不适合检测低表达的蛋白,低表达的还是采用western(尤其是化学发光底物更佳)和免疫组化更好。当然,流式最大的一个特点就是,可以定量(百分比),如果是高表达的用流式细胞仪非常有优势。
流式检测时要求有抗体,可以是直接标记或简介标记的荧光抗体。细胞需要预先固定处理,常用的是多聚甲醛、TritoonX-100、75%乙醇等,具体步骤可参考相关文献,都有详细说明。
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jrwyyplt[使用道具]
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我想检测细胞内的cyclinD及P14,P15,P16,P21等的表达,不知可行性如何?

多多交流,共同进步!
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园丁##[使用道具]
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请问流式可以检测活体莹光蛋白吗,细胞如何处理?
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了了[使用道具]
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回复上面两位同志:

实验室曾经有人检测过cyclin以及P21,效果还行,不过细胞处理是别人做的,我建议你还是要读原版的操作步骤较好,毕竟我们有丁香园,可以找到相关的文献。

流式可以检测活体细胞的荧光,非常简单,只要消化成单个细胞就可以上机检测了。
不过要注意流式多是采用激光激发,对于荧光蛋白能否检测关键是其激发波长和检测波长必须流式仪装配才行,流式仪经常配的是488nm的激光器,我室的流式还有另外一个激光器,是630nm左右,所以可以检测的荧光分子会多一些。常用的绿色荧光蛋白检测采用的是488nm激发,530nm检测。至于其它的蛋白,我尚未检测过。只要弄清楚其激发波长(excitation wave length)和检测波长(emission wave length)即可。
我有一个各种荧光标记的激发波长(excitation wave length)和检测波长(emission wave length)的汇总表,我会发上来,其它需要进行流式检测的同志在选择公司给的各种各样标记的抗体时,可以按照其说明进行选择,千万不要到时候,买了抗体却不能检测,那才冤枉呢。
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了了[使用道具]
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荧光抗体标记的选择指南:

对于流式检测最初的一步就是选择何种方法,通常是何种荧光物 质标记的抗体。厂家根据需要开发了各种荧光标记的抗体,进行 选择时首先要满足的就是所选择的抗体必须在流式上能够检测, 各单位买的流式仪功能不完全一致,首先要和检测方进行联系, 看能否检测。在附表里我将常用的荧光标记物质的激发波长和检 测波长给出,可以参考。有几个原则一起说一下:
1 流式检测时首推荧光物质直接标记的抗体,如果没有直接标记 的抗体,用间接发,即二抗上标记荧光分子同样可以。不过这增 加了处理的难度,处理步骤增多,往往会不同程度影响检测结果 。
2 厂家推出的抗体有一些明确写明适合流式检测,而另一些则表 明适合免疫组化、western等,首选前者,可以保质保量,但是后 者并不是不可以用,一般来说如果没有明确的表明适合流式检测 的抗体,采用后者也是可以的,不过要注意其检测结果不一定非 常理想。
3 单抗和多抗均可应用。
4 绿色荧光蛋白等本身有荧光的物质在检测时会占据一个荧光通道,我也曾碰到几次有人将转了绿色荧光蛋白的细胞再采用FITC 标记的抗体来检测目的蛋白(据说还有人用此方法得出了满意的 结果!),岂不知绿色荧光蛋白和FITC是一个荧光通道,更本不 能一起检测。
5 如果是检测淋巴细胞这类细胞,经常用到多种抗体同时标记, 选择时切勿选错。我自己比较倾向于多重标记,因为这样可以减 少抗体和细胞用量,特别是对于小鼠的血标本,经常采到的血量 微少,采用多重标记更有利。当然这要求流式操作者有较高的水 平,注意调节流式仪的各种参数。
暂且只记得这麽多,如有新的发现,会及时补充。


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园丁##[使用道具]
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非常感谢,我还有一个问题请教:
1、绿色荧光蛋白在转质粒后在细胞可以发光多久?
2、我打算做双标,那么两种一抗应如何加,是同时加还是做完一种以后再加另一种?
3、我要用转了绿色荧光蛋白的细胞来做另一种荧光检测,目的是进行两种荧光同时检测,会不会影响绿色荧光蛋白的检测,最好应如何处理,采用哪一种荧光抗体最好?我的检测对象为包浆蛋白?谢谢!
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请问培养的JEG-3细胞成团块难以制备单细胞悬液有什么好的解决方法?
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非常感谢,我还有一个问题请教:
1、绿色荧光蛋白在转质粒后在细胞可以发光多久?
2、我打算做双标,那么两种一抗应如何加,是同时加还是做完一种以后再加另一种?
3、我要用转了绿色荧光蛋白的细胞来做另一种荧光检测,目的是进行两种荧光同时检测,会不会影响绿色荧光蛋白的检测,最好应如何处理,采用哪一种荧光抗体最好?我的检测对象为包浆蛋白?谢谢!

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1. 绿色荧光蛋白GFP只要蛋白不降解,荧光不会萃灭.若做稳定表达,那就可以随时观察荧光,但做稳定表达时程很长;若做瞬时表达,在转染后48小时左右应该就有GFP表达,可以观察荧光.
2. 做荧光双标,一抗可以同时加,二抗也同时加.但是,两个一抗要不同种属来源,两个二抗用不同的荧光标记.比如说,第一个一抗为鼠抗A(单抗),第二个一抗为兔抗B;第一个二抗为抗鼠IgG(cy2标记,绿色荧光),第二个二抗为抗兔IgG(cy3标记,红色荧光).在荧光显微镜下观察时,可以在同一个视野分两次激发观察,并分别照相,再将两次照相叠加.这样可以在同一个细胞内,观察抗原A和抗原B的亚细胞定位.
3.用转了绿色荧光蛋白的细胞来做另一种荧光检测,不会有什么问题.最好用cy3标记的二抗去染另一种蛋白.因为绿色和红色的差别很分明,二者叠加又是黄色的信号.
我说的cy2标记的抗鼠IgG和cy3标记的抗兔IgG在KPL公司有买.
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了了[使用道具]
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不知道你实验过何种方法。
我没有太多的经验,一般来说消化细胞先采用胰酶消化,如果不行,则考虑用胰酶和胶原酶合用,或者采用加入pronase、EDTA等,在经过一定的酶消化之后,一般来讲会得到较多的单个细胞,再用筛网过滤一下将成团的细胞去处,可以进行进一步的流式检测。
土人兄在上面发表了很好的帖子,不知在此方面有何高见。
欢迎各位有经验者发表高见。
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园丁##[使用道具]
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感谢!帮了我的大忙!请问你用tritc和绿色荧光做过双标吗?效果如何?
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