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标题:[分享帖]流式图片专区

whitesheep[使用道具]
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为什么不能解压缩?也改了前缀,但是他还是提示要压缩卷。
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duoduo[使用道具]
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请问哪位大侠知道如何以流式细胞仪检测细胞核内蛋白。上次问过BD公司的工程师,说需要将核膜打孔,不知有没有人做过?具体方法如何?效果怎样?
另外以流式细胞术怎样测定进行所需检测物质的定量研究?(不是做细胞亚群分析)
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如果你检测的是胞内分泌性蛋白(如细胞因子),应在细胞培养过程中加入莫能霉素,以阻断细胞因子的分泌;收获细胞后以4%多聚甲醛固定20min,加入0.1Triton X-100破膜10min,以后步骤与检测膜表面分子相同。也可采用皂素进行破膜。
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baidukk[使用道具]
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我近期也要做流式细胞仪,但是同实验室没有人做过,所以这方面的经验比较少,看了这里发的帖子以后明白了许多,请问细胞固定后怎么保存呢?可以保存多少天呢?因为做time course的时候不能同时收集那么多的samples,而且要排队才能做上。
多谢啦,先!
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yychen[使用道具]
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大家好!我用流式检测血小板活化标志物----CD62p以及MPA(血小板-单核细胞聚合物)。
   
我查阅不少资料,总结全血法双标测血小板活化的步骤如下,请您指正!
1,采血抗凝,血液以9:1与抗凝剂(3.8%枸橼酸钠)混合;
2,等体积多聚甲醛固定(终浓度1%),室温孵育10-15min;
3,PBS洗涤一次(2000rpm×5min);
3,取试管2只,均加入5ul 全血和100ul BSA-PBS缓冲液;
4,标本管加入10ul CD62p-FITC以及10ul CD42b-PE,对照管加入10ul IgG1-FITC以及10ul CD42b-PE,室温避光孵育30min;
5,加1ml PBS,上机检测。
6,用CD42b表达量和侧向散射光(SSC)设门来选定血小板;
7,做对照管,调节阳性区的假阳性率为1-2%;
8,做标本管,得出CD62p的平均荧光强度,及CD62p的阳性百分率。

而今问题是:
1,洗涤时用全血还是静置后上清?如果后者,与富血小板血浆法有何区别?
2,CD42b阳性率不高,它可否作为血小板设门的抗体?我知道常用的有CD41和CD61。
3,先标记后固定的标本可保留几天检测?

烦请各位赐教!谢谢!切切为盼!
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了了[使用道具]
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回复:
我近期也要做流式细胞仪,但是同实验室没有人做过,所以这方面的经验比较少,看了这里发的帖子以后明白了许多,请问细胞固定后怎么保存呢?可以保存多少天呢?因为做time course的时候不能同时收集那么多的samples,而且要排队才能做上.

       一般来讲,实验是观察不同时间点对细胞的影响,我的建议是先作时间最长的点,依次递减。譬如:观察药物作用12h、8h、4h、2h对靶细胞的影响。可以同时培养细胞,12h的药物先加入培养细胞中,过4个小时后,加入药物预定观察8h的细胞,再过4h加入到预定观察4h的细胞中,再过2小时,加入药物到2h组。这样,可以同时收集各个时间点的细胞,同时处理上机检测,避免了细胞固定或者多次检测 的麻烦。
一般来讲,固定的细胞或多或少对检测有一定影响,我比较推崇采用新鲜细胞进行检测。所以我建议还是采用上述方法,同时检测,这样的结果会更好。
在我们实验室,我曾经多次回答类似的问题,希望其它想进行不同时间检测的同道采用这种方法。
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而今问题是:
1,洗涤时用全血还是静置后上清?如果后者,与富血小板血浆法有何区别?
2,CD42b阳性率不高,它可否作为血小板设门的抗体?我知道常用的有CD41和CD61。
3,先标记后固定的标本可保留几天检测?


流式细胞仪设门区分血小板最简单的方法是采用FSC和SSC,当然采用CD42、41、61都可以,但是如果为了设门还要再买一个抗体似乎并不合算,而且多个抗体同时加入增加了检测的难度。一般来讲采用采用FSC和SSC来区分血小板是能满足需要的,当然采用抗体标记更准确。由于采用FSC和SSC设门可以有效的区分血小板和红细胞,所以采用全血或者分离富集血小板并没有太大差异。

另外,在加入抗体后最好用PBS洗涤一次,这样可以去除非特异性结合。

我没有对固定的血小板进行保留天数的观察,原则上还是新鲜标本,早做早好,一般来讲固定72h还是效果不错的。你可以在检测时比较一下,如果新鲜标本和固定72h或者更长时间没有明显差异就可以。
血小板活化受多种因素影响,一般在抽血后血小板一旦暴露到空气中即会活化,所以,我提醒你在抽血后尽早处理标本,否则抽血后到处理的时间长短很可能影响实验结果。具体事项可以参考相关文献。
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我想把血管外膜上的神经细胞在荧光标记后用流式细胞仪单独分选出来,然后再用Westen immunoblotting方法测定蛋白含量(因为这种蛋白平滑肌细胞也有),这种方法是否可行?
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我想把血管外膜上的神经细胞在荧光标记后用流式细胞仪单独分选出来,然后再用Westen immunoblotting方法测定蛋白含量(因为这种蛋白平滑肌细胞也有),这种方法是否可行?
理论上没有问题。但是有几点必须要注意:
1 要将血管外膜作成单个细胞,因为流式细胞仪检测的是细胞。
2 必须找到血管外膜细胞和平滑肌细胞的理想区分标记:抗体,这种抗体必须是血管外膜特异的。
3 流式细胞仪的分选成本较高。
4 流式细胞仪的分选纯度在95%左右,是不是少量混入的细胞(低于5%)会对检测有影响。
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关于血小板,每次检测全血标本时都需阴性对照的意义何在?
如何读出标本管的阳性率?是否先读对照管,控制阳性率1-2%?
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没错,检测是首先要确定阴性对照,一般来讲采用同型对照抗体,设定阴性对照的“阳性率”不能超过1%较好,但是没有必要每次都要作同型对照。一般来讲,进行比较的是实验各组之间的差异,与阴性对照的关系可能并不是很大。而且血小板大多数是比较的荧光强度。
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