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标题:[讨论帖]细胞划痕实验

october7[使用道具]
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楼主和各位战友关于细胞划痕实验探讨了很多问题,我受益匪浅,不知能否就transwell实验提供相应的实验方案以及相应的实验注意事项!!以供大家学习!谢谢了!
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wu11998866[使用道具]
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感谢楼主的介绍,我也在做相关的实验,由于考虑到将来投稿的问题,所以老板让做transwell实验,下面这个链接是总结Transwell实验的,各位可以参考:cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=66&id=7506372&sty=2')
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loli[使用道具]
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细胞划痕实验可以用来诱导Hela细胞伪足形成吗
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loli[使用道具]
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我有个问题想请问各位大虾:就是为什么要非要将细胞刮掉再来测定它的迁移率呢?为什么不能一开始就限定细胞的生长的面积?我的意思是说刚开始的时候为什么不能用琼脂糖加到PBS里面或者D-HANKS里面,直接做成胶状,待其凝固后,将一部分给刮掉,然后将细胞传到里面, 这样不久可以不用划痕了嘛?不知道这样做有什么不对?请各位指教!
看到有老外是这么做的,不知道可不可行?

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老兄,这个我试过。结果是。。。失败。几个问题。
1。细胞会趋向于琼脂那面,造成不均匀。这个可能和表面吸附有关。
2。低浓度琼脂很软不行,高浓度琼脂不知道为什么会让培养基迅速变黄。可能是琼脂不纯。
3。琼脂很不好切割,高浓度琼脂(2%)因为比较硬,在切的时候,会和地面脱离,这样种细胞的时候,细胞就会渗到琼脂下面去。

我也看到老外做过,但自己总是做不出来。
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idea2011[使用道具]
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老兄,这个我试过。结果是。。。失败。几个问题。
1。细胞会趋向于琼脂那面,造成不均匀。这个可能和表面吸附有关。
2。低浓度琼脂很软不行,高浓度琼脂不知道为什么会让培养基迅速变黄。可能是琼脂不纯。
3。琼脂很不好切割,高浓度琼脂(2%)因为比较硬,在切的时候,会和地面脱离,这样种细胞的时候,细胞就会渗到琼脂下面去。

我也看到老外做过,但自己总是做不出来。

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这个问题我当时也遇到过,我是这样处理的:
1、首先澄清一下我用的是琼脂糖,而不是琼脂,第一:琼脂没有琼脂糖干净,第二:琼脂的孔径存在问题,用琼脂糖可以大大减少这个细胞趋向这个问题。
2、我用的是0.8%的琼脂糖,这个浓度很好,不硬不软,当然我刚开始也有黄的现象出现,这样:当琼脂糖凝固之后,你先加一定量的完全培养基,等到24小时之后,再将这个培养基吸掉,这个时候再将细胞传进去,可以解决这个问题。
3、切的时候叫个女生来切,说实话,女生干这个比男生好
这样的话,我感觉就可以了,照片我就不上传了。当然,楼主的方法也不错,我也可以试着做一做。
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这个问题我当时也遇到过,我是这样处理的:
1、首先澄清一下我用的是琼脂糖,而不是琼脂,第一:琼脂没有琼脂糖干净,第二:琼脂的孔径存在问题,用琼脂糖可以大大减少这个细胞趋向这个问题。
2、我用的是0.8%的琼脂糖,这个浓度很好,不硬不软,当然我刚开始也有黄的现象出现,这样:当琼脂糖凝固之后,你先加一定量的完全培养基,等到24小时之后,再将这个培养基吸掉,这个时候再将细胞传进去,可以解决这个问题。
3、切的时候叫个女生来切,说实话,女生干这个比男生好
这样的话,我感觉就可以了,照片我就不上传了。当然,楼主的方法也不错,我也可以试着做一做。

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谢谢楼上的回答,我还有个问题。就是你铺玩细胞之后,把琼脂去掉的时候,你怎么处理的?很难弄得,我觉得
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greenbee[使用道具]
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这个问题我当时也遇到过,我是这样处理的:
1、首先澄清一下我用的是琼脂糖,而不是琼脂,第一:琼脂没有琼脂糖干净,第二:琼脂的孔径存在问题,用琼脂糖可以大大减少这个细胞趋向这个问题。
2、我用的是0.8%的琼脂糖,这个浓度很好,不硬不软,当然我刚开始也有黄的现象出现,这样:当琼脂糖凝固之后,你先加一定量的完全培养基,等到24小时之后,再将这个培养基吸掉,这个时候再将细胞传进去,可以解决这个问题。
3、切的时候叫个女生来切,说实话,女生干这个比男生好
这样的话,我感觉就可以了,照片我就不上传了。当然,楼主的方法也不错,我也可以试着做一做。

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这个琼脂糖怎么灭菌的?直径是多少,大侠指点一下啊!
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greenbee[使用道具]
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这个琼脂糖怎么灭菌的?直径是多少,大侠指点一下啊!

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直接称取一定量的琼脂糖,用PBS或者D-HANNKS液调整浓度,放入一个大体积的烧瓶里面,包扎,灭菌即可。用的时候在微波炉里熔化即可用。
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greenbee[使用道具]
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我想知道你们在拍照片的时候需要染色吗,不然拍出来的照片会不好看啊,如果染色用什么染色好些,知道的告诉下,谢谢拉!
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sunnyB[使用道具]
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Gut. 2007 Jan;56(1):95-106. (sci Impact Factor 9.002 )
Thompson CC, Ashcroft FJ, Patel S, Saraga G, Vimalachandran D, Prime W, Campbell F, Dodson A, Jenkins RE, Lemoine NR, Crnogorac-Jurcevic T, Yin HL, Costello E.Pancreatic cancer cells overexpress gelsolin family-capping proteins, which contribute to their cell motility. Gut. 2007 Jan;56(1):95-106. (sci Impact Factor 9.002 )

方法:In vitro wound-healing assay
Panc-1 and Suit-2 cells were treated with siRNA as described above. After incubation for 72 (CapG) or 48 (Gelsolin) h, the cells were removed by trypsinisation, counted and plated at 400000 cells/ml in 12-well dishes. Cells were incubated overnight yielding confluent monolayers for wounding. Wounds were made using a pipette tip and photographs taken immediately (time zero) and 12 or 16 h after wounding for Suit-2 and Panc-1 cells, respectively. The distance migrated by the cell monolayer to close the wounded area during this time period was measured. Results were expressed as a migration
index—that is, the distance migrated by siRNA treated (control or targeted) relative to the distance migrated by RISC-free control RNA treated cells. Experiments were carried out in triplicate and repeated at least five times.


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