细胞世界

内皮细胞损伤模型
一、细胞因子损伤模型
将内皮细胞铺板后待即将单层融合时，换无血清或低血清培养基，加入细胞因子如IL－2，TNF－alpha、IFN等，共同孵育一段时间，或者加入药物与之共孵育，或者加细胞因子之前先加入药物孵育后，再加细胞因子，结束后测一些指标如MTT、LDH、NO、等等看药物对细胞因子损伤的保护作用。也可采用不同的时间、不同的浓度来观察。
二、缺氧－再供氧损伤模型
也是先将内皮细胞铺板后待即将单层融合时，换无血清或低血清培养基，先将细胞置于95％N2和5％的CO2的混合气的缺氧槽环境中注意保持37度的温度，用耗氧仪持续监测缺氧槽中的氧分压，使之保持在0.5 KP左右，细胞在低氧环境中培养一段时间后在移入正常的培养环境，可观察不同的缺氧时间、不同的给氧时间对内皮细胞形态功能的影响，也可结合药物观察，入上所述。
此外，内皮细胞的损伤模型尚有双氧水损伤模型、氧自由基损伤模型、氧化型脂蛋白损伤模型、等等。最后提及一点，楼上说的ox-LDL损伤模型的浓度不是很准确，因为从目前国内外的文献来看，oxLDL（10-50ug/ml）的浓度一般不会损伤内皮细胞尤其是内皮细胞系，如ECV304，恰恰相反，的浓度的ox-LDL会促进细胞的增值，国内有人报道，ox-LDL造成ECV304凋亡的浓度一般为150ug/ml~200ug/ml,也有用100g/ml的。

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在细胞因子损伤模型中，为什么要无血清和低血清培养呢？有些细胞太娇弱了，在这样的情况下很容易调亡！请问如果在正常培养情况下直接做细胞因子损伤模型可不可以呢？

请教：在血管内皮细胞敢于试验中，选择第几代的细胞有没有什么标准和规定呀？有谁能够指点一下？？

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原代细胞在传代、培养过程中，会改变细胞的某些特性。
所以用于实验的细胞最好不要超过5代，并且全部实验都用同一代的细胞。