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标题:[讨论帖]细胞活性测定方法专题讨论

xingyi08[使用道具]
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请教:悬浮细胞怎么做MTT,一定要离心吗?离心的速率是多少?请教孔板怎么离心?新手还是实验准备阶段,望大家不吝赐教!!
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langlang[使用道具]
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我做MTT 做了很多,现将一些体会与大家讨论:
1.结合本实验条件,摸出最佳培养时间。
2.设置复孔最少3,有梯度最好,这样才科研精神!
3.结果重现性差?主要是因为不一致,体现在1.没有合适的对照或没有对照。2.培养时间、加入mtt时间不一致或mtt作用时间相差太大3.出现紫色结晶后,加入dmso后,微型摇床作用时间不一致,最好是结晶完全溶解。
4.尽量减少影响因素(如:mtt配置的方法,溶解剂等。
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langlang[使用道具]
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请教:悬浮细胞怎么做MTT,一定要离心吗?离心的速率是多少?请教孔板怎么离心?
答:这要看你的悬浮细胞中残存的培养基是不是对你的实验有很大影响, 一 般你可以更换培养皿就可以避免因离心造成的不必要的细胞丢失。
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我最近做了几次MTT,结果很不理想,感觉是干扰因素太多.加药作用后再加MTT,细胞量少的孔显色倒深都成紫色了,可能是药物的影响。后来我在药物作用后用不含血清的培养液洗了两次,再加MTT,结果依然这样。酶标仪测的结果跟显微镜下观察的结果正好相反 。肯请各位做过MTT实验的前辈指点。
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tianmei001[使用道具]
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如果是测定细胞在一段时间内的活性,则可以用微量热法,直接监测细胞代谢的热效应。代谢活性强则当然放热量大。可以定量表示为细胞的代谢焓变,甚至可以计算出单个细胞的代谢焓变,测定精度高,重现性好。不过这个方法需要微量热仪,最便宜的也要30多万,贵的100-200万。
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redbutterfly[使用道具]
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我做MTT来测定药物对肿瘤细胞的作用,发现药物浓度越高OD值也越高,不得其解,而在显微镜下明明看到药物浓度高的细胞形状明显改变,请高手们多多指点迷津.
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969[使用道具]
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总感觉MTT法存在太多的误差。可能是因为我还没掌握要领吧。

首先有一个问题想请教一下:

对于不同的细胞是不是都要做一个细胞数和OD值的线性曲线,具体实验方法,哪位有文献可以上传吗?

细胞中加完药物3天-5天后取样,这期间培养液会变黄,因为细胞仍在生长,但些时也没有办法去补培养液,除非补加含相同药物浓度的培养基,不知大家是怎样做的。如不补加培养液,细胞会因为营养不充分而部分死亡,当然阳性对照也是这样,不知这对实验会不会有不可接受的影响?

加完MTT,4小时后需将MTT吸走,再加入DMSO,该步骤极易将形成的结晶吸走,有没有好的办法,我只能用MTT。

想研究病毒、药物的协同作用,大家在实验设计上是否有好的办法。做了几个月实验,感觉没什么收获。狂郁闷·
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泡泡[使用道具]
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楼上的问题也是偶想知道的,
1)在做MTT之前是否需要做每一种细胞的生长曲线???
2)使用MTT法筛选药物对肿瘤细胞的抑制作用,在药物与细胞作用结束之后,是否需要将药物连同培养基吸除,再加入新鲜培养基培养24h后再加入MTT液测量呢?有人说这样可以评价细胞的增殖能力,但很可能细胞在培养一天后也就长到了与对照组差不多的状态。
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hot_hot_hot[使用道具]
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我也是遇到这个问题,发觉药物作用过的细胞OD值比对照的要高,但在光镜下看到药物作用过的细胞明显变少好多,唉,百思不得其解,请各位高手指点迷津!
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hot_hot_hot[使用道具]
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我曾经尝试过用PBS稀释CCK-8, 好象效果不如用培养基稀释好. 怕培养液对读数有影响,可以做空白对照.
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