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在细胞培养中，除了常规应该注意的问题，每个人都会有自己的“独门秘技”，不妨拿出来一起分享，一起讨论，一起提高。也不限于细胞培养，如果在其他实验中有什么“独门秘技”，也请拿出来分享。
我先来抛砖引玉，有的是老师教的经验，有些是网上学来的别人的经验，也有自己的心得，说得不对的，请大家指正：
1、不要等一瓶细胞培养液完全用完，才启用第二瓶。最好第一瓶还剩一点时，就启用第二瓶，如果第二瓶培养液有问题（如被污染），不致于毁掉你所有的细胞。
2、不要指望让自己的所有细胞“步调一致”，即在准备用来做实验的几瓶细胞较一致的同时，使另几瓶细胞量有多有少，以确保细胞不致于同时长过了死掉，或同时因瓶内细胞太少没长起来。
3、有时候经验上的“多少瓶细胞长多满能接种多少块培养板”，比细胞计算板来得更可靠，毕竟用细胞计算板计算其实夹杂了太多主观因素。
4、有时遇上长假，又不想把细胞都冻起来（毕竟重新复苏的细胞状态还是要差点），可以把吹打过细胞的吸管的头在新培养瓶的培养液中沾一下，继续培养，一般能保持一个星期以上没有问题。各人可以根据自己的细胞摸索一下。
5、关于胰酶消化贴壁细胞，其活力主要在于浓度。所以我消化细胞时喜欢在倒掉旧培养液后将培养瓶立起来几十秒，吸去流下的培养液，吸极少量胰酶润一润，再吸走，再吸入一点点胰酶消化，轻轻摆动培养瓶，让胰酶浸润到所有的细胞。我试过多种细胞，一般这样消化个一两分钟，就可以吹打了。一般1ml胰酶能消化2～3瓶细胞没问题，而且效果强于倒掉旧培养液后直接滴入1ml胰酶消化10分钟（毕竟倒掉旧培养液后瓶内不止残留1ml旧培养液，再入1ml胰酶，其浓度只有原来的一半）。这是我看到别人的经验后试了下，改了下，不全是我自己的。
欢迎大家参与讨论，有说得好的，请版主不要忘了举举小手手。
