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标题:[讨论帖]做树突状细胞的同行们请进

gemei0115[使用道具]
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不好意思,我不是原代培养的,我养可传代的DC细胞株,不过对DC的分离还是有一点了解的,毕竟我差点就原代培养了。
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baidukk[使用道具]
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不好意思,我不是原代培养的,我养可传代的DC细胞株,不过对DC的分离还是有一点了解的,毕竟我差点就原代培养了。

请问,你的DC细胞系是什么名字?小鼠的还是人的?还有一个问题想请教,DC细胞建系后的状态是成熟的还是未成熟的?谢谢!
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baidukk[使用道具]
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给大家介绍一个能够更好的分离高纯度单核细胞的方法,简单步骤如下:
Step 1: 取回抗凝白膜,用等体积的DPBS稀释;10ml/份置于15mlFicoll之上,400g,20分钟;
Step 2: 吸出white band,15ml/份,稀释在35mlDPBS(含1Mmedta,PH值7.2)或者生理盐水中,150g离心10分钟,移走上清中的血小板;反复两次
Step 3: 细胞重悬在完全培养基(IMDM)中,计数;
Step 4: 细胞被进一步稀释为1-2×10^6PBMC/ml, 25ml/份,轻轻的置于
46%的Percoll [46ml等渗Percoll (9.25mlpercoll/0.75ml 10×DPBS) +54ml含酚红的完全培养基]上, 不间断离心550g, 30分钟;
Step 5: 离心后,单核细胞在上下两层的中间,淋巴细胞在最下面.

这样得到的单核细胞纯度较高,而且Step1的稀释和step2的洗涤可以大大减少血小板的污染,尤其是step1!
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cocacola[使用道具]
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我的是小鼠的,不过穿了几代后被我养死了,我都不知道出了什么问题,下次复苏我再试试,有没有人对DC2.4有培养经验的啊,***求知道啊?
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mickeylin[使用道具]
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我做的是脐带血分离诱导培养DC,但是也是发现有好多杂细胞,其中有些贴壁,有些较小悬浮,而且诱导出来的细胞大小相差较大,大的细胞在光镜和电镜下都发现线粒体较肿胀。不知道如何解释?
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jkobn[使用道具]
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用正常外周血和浓白的分离步骤是一样的。只是第一步离心时用的梯度离心液的量不一样,因为同体积浓白中的细胞更多,离心液用得也多(15 mL in 50 mL tube)。我的目的只是要拿到DC,所以用浓白效率较高;有人是为了研究患者的DC,所以是采外周血。
我后来又分离培养了4次DC,只要离心速度(尤其是清洗时)合适,不会有问题。还有,我不知道你的DC养在哪里,我是养在24孔板里。据说是1~2 * 10(6)/孔的密度,但我觉得用0.5 * 10(6)/孔 更好,后来收的DC更多。
那个贴壁再洗的方法不知道你试过没,我算了一下,洗一次大概损失15%的细胞(心疼啊~~~),不过为了纯度,只好忍了:)
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请问Step1中的的抗凝白膜是不是就是直接从血站拿的浓白?
我感觉血小板比较“轻”,梯度离心似乎很难除掉,倒是Step2的清洗很重要。
另外Step4中的细胞需要严格调整浓度吗?因为我没调过,而暂时也没出问题~~~
还有就是血小板和细胞碎片在光镜下看有什么区别呢?用多少放大倍数能看出来? 我一直对这个比较晕:)
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jkobn[使用道具]
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你说的传代是什么意思? 我是把DC分出来之后养一周,然后刺激两天,收获成熟DC,中间再第三、五、七天的时候半量替换培养基。
还有请问什么是DC2.4?
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jkobn[使用道具]
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不知道你发现细胞贴壁和悬浮是在养了几天之后?
较大的贴壁的细胞形状是不是扁的,伸出长的“触角” (不好意思,非专业描述^^)?如果是的话,就是巨噬细胞。
较小的悬浮的细胞是不是圆形的?如果是的话,应该是DC。除了刚开始的几个小时,DC在培养过程中是悬浮的。
另外,你能把DC的照片传上来不? 我们这儿的光镜不能拍照~~~
还有我最近也想试试做DC切片,然后看电镜,不知道具体应该怎么操作,还请你多多指教!
多谢啦:)
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jkobn[使用道具]
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请问大家是用什么方法鉴定成熟DC的?
我是用CD86-FITC和CD83-PE联合标记,然后用流式鉴定。但我做的流式中CD83-PE的荧光强度总是偏低,不知道是怎么回事?
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