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标题:[讨论帖]免疫细胞或组织化学染色的相关问题

cj_mondy[使用道具]
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我的软骨细胞在4%多聚甲醛固定、PBS冲洗之后,晾干后细胞全融了,成了一片结晶, 用丙酮试固定也不行,固定时间从10至60分钟我都试过,细胞在干了之后还是全融了,怎么办?
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qhyu[使用道具]
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你好,我做的是一种小分子药物的免疫组化,由于药物极溶于丙酮等有机溶剂,我怕在固定和脱水时对病理组织上的药物有被洗脱的嫌疑,所以我想用冰冻切片。我以前也没做过免疫组化,手头有辣根过氧化物酶标记(单抗筛选时使用的)和荧光素标记的两种二抗以及DAB,不知道做好冰冻切片后具体步骤该怎么做?显色完后再逐级脱水还会不会对观察结果有影响,希望您能不吝赐教!!
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园丁##[使用道具]
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你好,我做的是一种小分子药物的免疫组化,由于药物极溶于丙酮等有机溶剂,我怕在固定和脱水时对病理组织上的药物有被洗脱的嫌疑,所以我想用冰冻切片。我以前也没做过免疫组化,手头有辣根过氧化物酶标记(单抗筛选时使用的)和荧光素标记的两种二抗以及DAB,不知道做好冰冻切片后具体步骤该怎么做?显色完后再逐级脱水还会不会对观察结果有影响,希望您能不吝赐教!!

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既然这样,那就做荧光染色吧!

具体方法:

1。4%多聚固定10-30min,0.01MPBS清洗5min×3;

2。羊血清封闭液封闭(可以加入0.3% Triton X100 )30-60min分钟;

3。加入用血清稀释液(牛血清白蛋白1.00g+0.01MPBS 100ml+叠氮纳0.08g+30% Triton X100 1ml)稀释的第一抗体室温反应1-2h或4℃过夜。吸去抗体,0.01MPBS洗5min×3;

4。加入血清稀释液或0.01MPBS稀释的荧光二抗,室温孵育1-2h。

5。吸去二抗,0.01MPBS洗一次,直接用50%甘油封片,进行观察。

good luck!
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qhyu[使用道具]
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哪还可以做冰冻切片进行电镜观察吗,如果可以,该怎么操作?谢谢!!是不是觉得我太菜了,主要是我以前没做过,心里没底。
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pencil菲[使用道具]
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老板要求我用cytospin来甩片后,做细胞的原位杂交、荧光染色等实验,请问这种离心甩片法与爬片等有什么不同,细胞经胰酶消化后离心会对它的抗原等物质有损害吗?要做细胞的原位杂交、荧光染色甩片后用什么固定比较好,固定时间多长?如何保存片子?(我还没查到相关资料,还不知道要检测什么,只想把片子保留,将来再做打算)各位高手是否给我在这方面的建议!!!,万分感激!
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xueyouzhang[使用道具]
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我细胞化学的一抗是染胞浆,但是从我做出来的片看,无论我用1:50、1:200、1:400的一抗浓度,DAB 都在胞核深染,而胞核却染得很淡。为什么呢?
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园丁##[使用道具]
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我细胞化学的一抗是染胞浆,但是从我做出来的片看,无论我用1:50、1:200、1:400的一抗浓度,DAB 都在胞核深染,而胞核却染得很淡。为什么呢?

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厂家推荐用多少??

可以把浓度进一步稀释,如1:500、1:1000、1:2000等!
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BOSS2011[使用道具]
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请教主任:我做细胞免疫组化,部位在胞浆,用苏木精复染核时,为何阳性细胞核很难染上,或兰色很浅,而阴性细胞核染的很好?另外一张片上有的地方为强阳性,有的地方为弱阳性,还有的地方为阴性,是我染色不均匀吗?
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请教主任;我做大鼠骨组织的免疫组化,想看骨组织细胞中Fas,FGF-2,TGF的表达情况,用的是石蜡切片 ,是两步法,在用二甲苯脱腊2次,各20分钟后,用无水酒精×2,各5分钟,在用95%酒精×2,各5分钟。接着用0.01M的柠檬酸缓冲液作为抗原修复液,先90度,3分钟,在55度,12分钟。而后,出现严重的脱片,最好加完一抗,二抗,DAB后,片子上什么也没有,镜下可见没有被染上色的骨髓腔中的血细胞,视野中几乎看不见骨组织。之前片子用PLL和APES涂过了。实验室的老师说是骨组织太硬了,一用微波修复就容易漂起来。但又有人说,骨组织用微波修复能作出来,我想请教主任,脱片是微波修复的原因吗?上述有没有其它的步骤可能导致脱片?有什么好办法能防止脱片吗?我在这先谢过了!做不出结果,真急啊!
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nn255[使用道具]
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请看:

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