【求助】最近在做非变性活性电泳实验步骤如下

最近在做非变性活性电泳,遇到些问题不知怎么解决。我的实验步骤如下:
1.电泳:分离胶交联浓度12%,加SDS,与普通变性胶一样,浓缩胶不加SDS,上样缓冲液和电泳缓冲液均不加SDS。冰水混合物中电泳,电压100v.
2.洗去SDS:2.5%Triton X-100 振荡1h.之后pH7.2磷酸盐缓冲液洗3次。
3.反应:50度下 泡在酪蛋白溶液中反应30min.
4.考染脱色
如图:
两种样品,空白区域太大,可能是酶活高,未稀释。
另外,我想拿胶去做质谱鉴定,不知可不可以。酶将酶本身及周围区域的酪蛋白和周围的蛋白(?会不会分解周围原有的蛋白)都分解,显示白色,做个对照不加酪蛋白的对比下,看哪个条带继续存在就是酶的条带,不知对不对?然后去鉴定。
这两张图,貌似也看不出来。还有什么好的办法啊。我就想弄清同工酶的种类。


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最新回复

  • xgy412 (2016-3-17 11:55:08)

    空白区域是,酶还有活性,把周围的酪蛋白分解而形成的,没被分解的被染成蓝色。恩,我再试一下,不加SDS,切胶用滤纸片在平板上显色。谢谢!
  • 美人鱼 (2016-3-17 11:55:30)

    两种样品、空白区域是什么意思?
    能不能不加SDS?这东西也算是个变性剂。
    能不能跑胶结束后贴在平板上显色?
  • 大花猫bb (2016-3-17 11:55:52)

    最近做的非变性蛋白电泳,12%的分离胶,条带不往下跑而且有的地方脱色脱不掉,后来用8%的分离胶,颜色根本就脱不掉是怎么回事?下面前面是12%时的胶非变性胶,两边的泳道是变性maker,只是用来检测,没有标记作用的;后面的是跑的变性的。而且变性蛋白电泳的条带在非变性中跑不出来。。请专业人士帮忙解决一下。。。非常感谢!!!
  • 8899 (2016-3-17 11:56:13)

    SDS-PAGE 12% 0416-1.JPG
  • 今生如此 (2016-3-17 11:56:35)

    我是做蛋白质电泳的,看看各位大侠有没有什么方法,可以将目标蛋白从聚丙烯酰胺胶中割出来并回收,除了用专门的试剂盒外,看看是否在操作中有什么要求的注意事项?
  • 跳跳哈里 (2016-3-17 11:56:59)

    可以使用PAGE胶微量蛋白回收试剂盒 BSP062
  • 燕子@ (2016-3-17 11:57:19)

    请教下这个具体步骤是什么?
  • 女儿情 (2016-3-17 11:57:41)

    跑活性胶,将两侧的泳带切下,正常固定染色脱色,然后对照两条泳带的条带位置,将蛋白条带切下,加液氮研磨后,用缓冲溶液浸提。