蛋白质与蛋白组学 » 讨论区 » 经验共享 » 【讨论帖】western blotting试验技术讨论

采购询价

点击提交代表您同意 《用户服务协议》 《隐私政策》

 
需要登录并加入本群才可以回复和发新贴

标题:【讨论帖】western blotting试验技术讨论

rxcc33[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 79965
精华 0
积分 633
帖子 885
信誉分 100
可用分 5303
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-18
状态 离线
31
 

我觉得WB最关键的是抗体~有一个好的特异性强的抗体比什么都重要~
近来备受一个血清抗体的折磨,唉,痛苦中
顶部
ukonptp[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 103464
精华 5
积分 796
帖子 992
信誉分 110
可用分 5846
专家分 50
阅读权限 255
注册 2013-1-11
状态 离线
32
 

只要你做过WB试验,你一定会有成功的经验或者失败的教训;只要你言之有物,我就会投你一票的,版主也会加你一分的。这可能对你不重要的,更重要的是每一个人都这样把自己懂得的知识都分享出来,这就是一本用钱买不到的专著(现实中的太偏见了)。
顶部
gmjghh[使用道具]
三级
Rank: 3Rank: 3


UID 75184
精华 0
积分 475
帖子 589
信誉分 100
可用分 3823
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-10-20
状态 离线
33
 
这里主要谈谈封闭、孵育和洗涤:
一.封闭(block) 封闭是为了使我们的抗体仅仅只能跟特异的蛋白质结合而不是和膜结合。常用的封闭液有bovine serum albumin(BSA),non-fat milk,casein,gelatin,tween-20等,我们一般用non-fat milk。
在转移结束前配好5%的Milk(TBST溶解)。转移结束后将膜放入milk中block(一定要放在干净的容器里,避免污染而且要足以覆盖膜),并清洗整理好用过的滤纸,以便下次使用。 Block 4°C O/N,或 RT 1小时。
二.(1).孵育一抗:
A.先将需要检测的抗体准备好,并决定好它们的稀释度。
B.配好5%的Milk(TBST溶解),按要求稀释好抗体。注意,如需高比例稀释,最好采用梯度稀释。
C.将稀释好的抗体和膜一起孵育。 一般采用RT 1小时,可根据抗体量和膜上抗原量适当延长或缩短时间。
注意:为了便于后面分析结果,我们一般会选用已确定分子量大小而且纯度高的抗体作为marker与一抗同时孵育。
(2).孵育二抗:
孵育 RT1 小时。 一般采用HRP标记的二抗,稀释比例为1:5000。二抗的稀释比例不能太低,否则容易导致非特异性的结合。注意二抗的选择有多种,要根据一抗来选择抗兔、抗鼠或者抗羊的二抗,以及根据后面的显色条件来选择HRP、AP或者GOD(葡萄糖氧化酶)酶链的二抗或者标志其他探针(如核素等)的。
三.洗涤:
一般用 TBST先快速洗三次,把milk尽快的wash掉。 然后5mins *5。洗涤是为了洗去二抗的非特异性结合,洗涤的效果直接影响结果背景的深浅,所以洗涤一定要干净。
顶部
ukonptp[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 103464
精华 5
积分 796
帖子 992
信誉分 110
可用分 5846
专家分 50
阅读权限 255
注册 2013-1-11
状态 离线
34
 

显影问题请教:

我最近做了一次WB,结果发现:同一张膜,我在孵育3min后,分别压了两张胶片(上右为图1,压片 2min和上左为图2,压片8min);然后又继续再压了5min(见下右图3)。请教各位战友,这三张图出现了不同趋势的结果(同一张膜),哪一张图片更加可靠,请多多指教,谢谢!!!


查看积分策略说明
附件
2013-5-14 12:48
64481768.snap.jpg (19.84 KB)
 
顶部
rxcc33[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 79965
精华 0
积分 633
帖子 885
信誉分 100
可用分 5303
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-18
状态 离线
35
 
我做的蛋白条带间总是有连接,不好看.有的还弯弯曲曲的.是因为加样时太满溢出来的原因吗?上样量一共14微升,多吗?大家有什么好办法可以使条带之间有空隙,怎样做才能又直又齐呢?

===========================================================================================================

可能是上样量过多或者加样时太快,蛋白溢出来了。如果做0.75的板子,可能出现这种情况,建议上样量大时做1.5的板子。弯弯曲曲可能是你配胶时没有摇匀,我的经验是加AP,TEEMED前后都要摇匀,这样做出来的胶跑出来的条带才漂亮。还要注意SDS出现混浊也不要用了。
顶部
rxcc33[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 79965
精华 0
积分 633
帖子 885
信誉分 100
可用分 5303
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-18
状态 离线
36
 

还要提醒大家一点:
大家看抗体说明书时,除了抗体稀释度,作用条件,时间以外,还要注意不同的抗体,洗膜时也可能不同。前段时间做P-ERK时,说明书上就写明洗膜时用水洗两遍,PBST洗2-3min,再用水漂几遍就可以了。我用这个方法条带出来了,背景也很干净。
顶部
rxcc33[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 79965
精华 0
积分 633
帖子 885
信誉分 100
可用分 5303
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-18
状态 离线
37
 

还有个问题,有没有做磷酸化蛋白的啊?
今天看一个师姐做磷酸化的蛋白时她在封闭液里面也加了磷酸酶抑制剂,大家觉得有必要吗?
顶部
rxcc33[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 79965
精华 0
积分 633
帖子 885
信誉分 100
可用分 5303
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-18
状态 离线
38
 
显影问题请教:

我最近做了一次WB,结果发现:同一张膜,我在孵育3min后,分别压了两张胶片(上右为图1,压片 2min和上左为图2,压片8min);然后又继续再压了5min(见下右图3)。请教各位战友,这三张图出现了不同趋势的结果(同一张膜),哪一张图片更加可靠,请多多指教,谢谢!!!

======================================================================================================

你的蛋白是有两个条带的吗?如果不是,建议你压多张片子时下面的片子用双面胶固定,不然拿上面的片子可能挪动下面的片子,造成重影。
顶部
tangxin_80[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 79896
精华 0
积分 549
帖子 757
信誉分 100
可用分 4621
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-17
状态 离线
39
 

1.我们用的转膜缓冲液都重复了很多次了,效果没有什么不好。原来电泳缓冲液不敢重复用,后来有个经验丰富的老教授说,用一次就扔掉太浪费了,现在重复用三次,电泳的结果也不错。
2.一抗重复,尝试过,有时效果不受影响,有时就根本出不来,由于是用5%脱脂奶粉稀释一抗,奶粉即使4度放置时间久了也会变质,所以现在不再重复用了。有一次竟然闻到奶粉有异味,毅然决定不用重复的一抗了,不过如果用其他的稀释液可以重复试试,没有经验。
3.磷酸化蛋白检测比较麻烦,有的要求蛋白变性时要用温和些的条件,比如降低变性温度等。如果蛋白丰度低或者磷酸化蛋白,推荐piecer(貌似拼写的不对,:))的敏感型发光底物,一次对比就有感觉啦。
顶部
rxcc33[使用道具]
四级
Rank: 4


UID 79965
精华 0
积分 633
帖子 885
信誉分 100
可用分 5303
专家分 0
阅读权限 255
注册 2011-12-18
状态 离线
40
 


QUOTE:
原帖由 tangxin_80 于 2013-5-14 12:53 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

1.我们用的转膜缓冲液都重复了很多次了,效果没有什么不好。原来电泳缓冲液不敢重复用,后来有个经验丰富的老教授说,用一次就扔掉太浪费了,现在重复用三次,电泳的结果也不错。
2.一抗重复,尝试过,有时效果不受影响,有时就根本 ...

我们转膜常规重复使用三次。电泳液是下缓冲液倒掉,上缓冲液保留,下次使用时做下缓冲液用。
顶部