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标题:【讨 论】WB半年感悟

shenkunjie[使用道具]
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恕我来多几句嘴。nba是个懂行的人。我认为她(他)的意见很有价值。
关于封闭,我的意见是用5%的脱脂奶粉,RT,1~2h,效果很好。
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fsdd817[使用道具]
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我是一个新手,想请教一下,在做WT时,用的抗体浓度1:200(商家推荐是1:200~1:1000),结果出来的蛋白的量的信号就很不明显,而膜本身的信号很强,我不知该采用什么样的补救措施,请教各位高手,谢谢
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remonte[使用道具]
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背景高时, 应采取如下解决办法:
1. 加大抗体的稀释倍数;有时候你可能觉得已经很稀了,但你还是稀释的不够. 大胆稀释吧!!
2. 改变封闭液的配方;
3. 用封闭液抗体;
其中最有效的办法是1.
另外, 楼主应首先做的是ELISA 或DOT BLOT,尤其应做用电泳缓冲液处理的样品的DOT BLOT,以确定能否用你的单抗做WB. 原因有的战友已讲述一二,在此不再详述.
请一定循序渐进,方能成功.
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ending[使用道具]
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我是一个新手,想请教一下,在做WT时,用的抗体浓度1:200(商家推荐是1:200~1:1000),结果出来的蛋白的量的信号就很不明显,而膜本身的信号很强,我不知该采用什么样的补救措施,请教各位高手,谢谢
我的意见是:
1、把一抗按照1:500或1:800来稀释
2、加大你的上样量,因为你连自己的目的条带都看不见,就算光线很强,我觉得很能看见一点的
3、增加洗膜的次数和时间
个人意见,仅供参考
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bamboo16[使用道具]
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对LZ我还有一个建议,可以用孔径比较大的超滤膜,先将蛋白浓缩数倍,然
后用ECL显影。如果你不太清楚自己的抗体是否可以,可以先用该细胞的其它蛋白已有的抗体做做,如果可以的话,再检测你要检测的抗体。这样应该更可说明是什么问题。
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fsdd817[使用道具]
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谢谢,我又洗了5次,每次5分钟,但是效果还是不明显,目的条带还是不明显,只能隐隐的看到一点,再重新做一个加大稀释量吧,希望这次能行啊,谢谢
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hustwb[使用道具]
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先富集目的蛋白。如果没有条件做IP。那么其它富集的方法很多,比如离子交换层析,疏水层析,超滤,盐析等都行。
楼主说目的蛋白活性很好,那么肯定有测活性的方法。争取把蛋白溶液的比活性提高100倍再做WB,我就不信它不出来
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guagua[使用道具]
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我前面定的santa cruz 的抗体 说明书上有说4°保存 但是有个老师把我的冻到了-30 不知道还能不能做出来
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NBA[使用道具]
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问题从来没有那么绝对的,抗体忌讳的是反复冻融,而不是一两次的冻融;冻融无非是剪切力对蛋白的破坏。通常不会冻一两次就会导致完全失效,但是原始抗体通常冻融一两次效价会损失很大。所以应该还是能用的,只是效价可能会下降一些,反正抗体的最适稀释比对不同的人的操作还是有不同的,要摸索。如果标记不出来,无操作问题外,就是抗体本身不行,scbt很bt
此外,抗体的保存问题,其实以前我也回答过。
两种方案:
1. 分装。每次一管,但是可能太多占地方,而且还会有粘壁的损失,不是很推荐。
2. 1:1加甘油,冻于-20度,可长期保存,此方法实际上也被很多国内的试剂公司广泛采用,诸如博士得,中杉,它们小包装的进口抗体通常都是1:1添加甘油保存于-20(不信去查查)。值得注意的是:不是所有的抗体都可以1:1添加甘油,要以抗体说明书为准,如果说明书中本身存在甘油,或特殊注明外,通常可以采用。
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DDD[使用道具]
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最近忙得做实验,做啊做,都没空来看自己的帖子。
感谢各位战友的“七嘴八舌”!学习到很多东西
觉得NBA肯定是个经验丰富的老师吧~说话很专业很细节。恩,我想过自己做的一抗的无效,不过做DOT-BLOT的时候,还是可以做出结果来的。不过抗原用的是免疫的多肽,而不是细胞天然表达的蛋白。
后来又做了一次,还是膜很亮,曝光出来的片子是黑的~~~天啊~~~我要疯了!
但是我做的时候是有对照的,这个对照的抗体已经证明是可以和蛋白结合的,可最后也是一片黑~所以我想目前还不能说到底是不是抗体的无效问题,因为似乎是实验本身就没有作好的原因。如果曝光出来,对照有条带,而样品抗体无条带才能说明抗体本身的问题吧。
我决定还是加大洗涤的力度,多洗洗~~~
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