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[求助]怎样消化贴壁很紧的上皮细胞]
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我在培养人晶状体上皮细胞,传代时很难消化下来,我是用0.25%胰酶,放入37°C环境,不时拿到室温下用手拍打瓶壁,但是即使是这样持续20-30分钟,下来的细胞也只有一半,剩下的很顽固的贴在壁上,不知道怎么办才好,又不敢消化太久。你们有什么好办法可以比较块的消化下这个细胞吗?
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字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2012-7-24 15:03 作者: gemei0115 来源: 分析测试百科网
最新回复
yes4 (2012-7-24 15:03:23)
有两个要注意的地方:
1。首先消化的时候千万不要等到细胞完全融合,也就是俗称的长‘老’了在消化,这样是很难消化的,一般在大概90%融合的时候消化比较好,这点是很重要的。
2。消化时放在37度的时候不要总是拿出来看,放置10-15分钟后在拿出来看看,不然间歇的拿出来看,实际上温度没有达到37度。
pencil菲 (2012-7-24 15:03:44)
估计消化不下来的原因就是细胞老化了
dragonkilly (2012-7-24 15:04:09)
1。首先消化的时候千万不要等到细胞完全融合,也就是俗称的长‘老’了在消化,这样是很难消化的,一般在大概90%融合的时候消化比较好,这点是很重要的。
2。消化时放在37度的时候不要总是拿出来看,放置10-15分钟后在拿出来看看,不然间歇的拿出来看,实际上温度没有达到37度。
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以上正解,另补充三点:
一、注意胰酶的活性,1、初买的胰酶的活性;2、胰酶在PH7.8时活性最强;3、温度对活性的影响,如上提到过;4、宜低温保存,切不可室温或水浴时间过长致活性下降。
二、可提高胰酶浓度和使用量
三、联合EDTA使用。
wmp1234 (2012-7-24 15:04:26)
可以消化两次 第一次目的是尽量使细胞松动,再次消化时保证37度。
wmp1234 (2012-7-24 15:04:50)
补充一下,我是培养乳腺上皮细胞的,也比较难消化,我的观点是,首先是胰酶,最好是从-20度冰箱中取出后在37度温育10分钟左右,然后是先用少许的0.05%的胰酶覆盖细胞后吸取消化液靠残留的消化液消化,显微镜下观察大部分细胞变圆后再加入消化液消化,同时分批次将已上浮的细胞吸走,及时的中止消化,这样的话消化后的细胞活力较强,不知道是否适合人晶状体上皮细胞,可以试一下!
langlang (2012-7-24 15:05:13)
弃培养液加胰酶前用PBS冲洗一下,可以让胰酶更好起作用
Ao7 (2012-7-24 15:06:47)
用加EDTA的胰酶消化,再离心一下.
应该可以的.
dotaaa (2012-7-24 15:07:17)
我有两种方法你可以尝试一下:
一.将细胞用生理盐水洗两遍,加入0.25%胰酶,放置5% CO2孵箱5-10分钟,然后再显微镜下观察,轻拍细胞,将已经消化的细胞吸除,在加入胰酶消化就可以了。
二.就是先用生理盐水将细胞洗两遍,再加入生理盐水放置5% CO2孵箱5-10分,吸去生理盐水加入0.25%胰酶放置孵箱5-10分钟,就能消化下来了。
windy+++ (2012-7-24 15:07:34)
我的HK也是上皮细胞,联合EDTA 胰酶,消化好快,放0.8ml,几乎常温下放一分钟就变圆了.再冲几下就可以了.细胞消化得很好,一个个圆流溜的漂着,没贴壁的
我以前消化的时候,细胞长得太密了,加1ml细胞立即成片的起来,肉眼都看得见.
所以我的经验
1. 80%左右就传
2,加之前hanks液洗涤两遍,加消化液时尽量把hanks液倒干净.
2.加了消化液后,瓶子放匀,平拿轻放.保证作用均匀.
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