[求助]293细胞培养消化到什么程度为好?

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各位同志,谁在养293细胞呀!我用教材方法消化细胞,但传代很不好,我想请教:293细胞消化的什么程度为佳,怎么判断?还有养293细胞应注意什么?请养293细胞的同仁帮帮忙呀,尽快,谢谢!!
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最新回复

  • yes4 (2012-8-01 12:56:11)


    我一般会在消化之后把消化液吸出来
    所以看到细胞伪足收缩即停止消化,用培养液将细胞吹打散
    293挺皮实的,多吹几下没关系
  • tianmei001 (2012-8-01 12:56:27)


    293细胞贴壁不是特别牢固,很容易消化,加入胰酶后消化一小会就够了,看到细胞层疏松或者显微镜观察细胞变形即可马上弃掉消化液,轻轻拍打细胞就下来了。
  • moonlight45 (2012-8-01 12:57:34)


    293细胞贴壁不牢,我传代时用胶头滴管吹打3分钟,镜下观察细胞基本都已经脱落,然后就可以传代了。
  • vcve (2012-8-01 12:57:59)


    如果在10cm培养皿中加了1ml胰酶消化,待细胞变圆以后直接加培养基可以吗?会不会对细胞的生长有不好的影响?因为我的细胞一直贴壁不紧,用PBS一洗就会掉下来;转染18小时后发现连未用DNA转染的细胞有一部分少年生长奇怪,整体颜色很暗,师兄说可能是cell lysis,但是他也不肯定。我现在很着急,因为293细胞用GFP转染(磷酸钙法)没有成功。
  • tianmei001 (2012-8-01 12:58:19)


    293细胞很好消化,你所说的1ml胰酶消化用量太高了,10cm培养皿0.5ml胰酶足以,细胞消化时间的掌握并不像书上说的那么严格与恐怖,我曾经一次消化近20个培养皿或瓶,时间掌握没那么准,但结果并无大碍,你所说情况可能与胰酶用量稍高有关,建议减少用量。此外,养293时细胞密度能否尽量均匀也将影响其生长状态,所以消化时的吹打功夫还是蛮重要的!GFP转染(磷酸钙法)是否转染效率太低了?建议用腺病毒转染,毕竟293还是腺病毒的地道包装细胞啊!
  • 831226 (2012-8-01 12:58:38)


    转染效率与细胞状态有很大关系
    状态比较好的293用钙转一般效率都能到80%以上的
  • 小鱼鱼 (2012-8-01 12:58:55)


    我的293细胞怎么跟大家的不一样?昨天传代0.25%胰酶消化了5分钟以上,拍拍也不掉。掉也是一大块一大块的掉,然后任凭怎么吹也吹不散了。今天看培养瓶壁上就是一个一个的白点。愁死我了,这个样子怎么转染呢?是否是:1用胰酶加EDTA消化好?2 是否我的细胞状态已经太差没法恢复了?
    兄弟姐妹帮帮忙请!
  • glass (2012-8-01 12:59:12)


    肯定是没有吹打成单个的时候就传代或冻存了,以前我们实验室也有人出现这样的情况。这样,你先在胰酶里吹打,确定完全成单个后在加有血清培养液中和,然后离心。这样虽然细胞会有损伤,但能活下来的以后状态应该不错。等细胞状态稳定后再次传代时切忌不要在孵箱中消化,室温不到1分钟细胞变园时就中止消化,立即吹打50下,这样消化下的细胞都是单个,状态很好!
  • 小鱼鱼 (2012-8-01 13:01:41)


    我用0.05%的胰酶+PH7.2PBS就加到刚能盖到细胞为止,北到30秒就能看到细胞像小细沙一样从瓶底掉下来,很好消化。
  • 大尾巴 (2012-8-01 13:02:02)


    试一试下面的消化液,百try千爽^_^

    5 g KCl
    2.2 g Na Citrate

    上面准确称量后,定容500ml dH2O,高压蒸汽灭菌,4度存。
    具体配量自己按比例调整。
    使用方法:T25cm2为例,将293细胞培养基倒掉后,加1-2ml CS液洗一遍细胞,加约1ml CS消化液,37度或室温,根据不同实验室293细胞的状态,可自己调整消化时间,使用该CS消化液的优点之一就是,基本不用担心副作用,因为我们经常直接消化后直接接种到新鲜的培养瓶中,而不用洗掉CS消化液。
    good luck!

    补充: 293细胞比较脆弱,所以避免用胰酶/EDTA类消化,这样有利于进一步转染等操作。
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