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[求助]关于细胞吹打问题
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发表于: 2012-8-02 15:22 作者: fox_79 来源: 分析测试百科网
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[求助]关于细胞吹打问题
我做原代嗅鞘细胞培养,细胞总是吹打不开,总有细胞团存在,影响了细胞量,请问各位战友如何才能尽量使细胞吹打得撒一些
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[求助]关于细胞吹打问题
我也来说两句
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ending
(2012-8-02 15:22:54)
可再用胶原酶消化
fox_79
(2012-8-02 15:23:15)
楼上的,胶原酶是和蛋白酶一起使用,还是先后使用,胶原酶用不用中和?用什么中和?
ending
(2012-8-02 15:23:32)
单用即可,离心去除
831226
(2012-8-02 15:23:50)
我们实验室用夷梅消化,视细胞而定,通常可以肉眼看到细胞脱落为准,这时候加培养基中止消化,通常可以吹打下来
qumm1985
(2012-8-02 15:24:08)
我现在做乳腺癌细胞的原代培养,用的是胶原酶消化,结果细胞大部分是成团的。应该怎么办呢?应该用什么吹打细胞好啊?
fox_79
(2012-8-02 15:24:57)
我们实验室用夷梅消化,视细胞而定,通常可以肉眼看到细胞脱落为准,这时候加培养基中止消化,通常可以吹打下来
—————————————————————————————————————
是啊,我也是用胰蛋白酶消化的,很难将细胞制成单细胞悬液,成团的比较多。
xingyi08
(2012-8-02 15:25:31)
胶原酶没办法中和,只能离心后丢弃
胰蛋白酶可以用血清中和
可以先在倒置显微镜下侦察下或者直接肉眼就可以看到成团的细胞,用吸管在其周围轻轻吹打.吹打均匀的细胞分散在培养液中是浑浊的液体而不是絮状漂浮物,注意某些细胞如心肌细胞比较娇嫩,小心力度
dog002
(2012-8-02 15:25:49)
The easiest way is to flick the tube. That is the best way!
pengke1983
(2012-8-02 15:26:08)
胶原酶只能离心去除的,我平时用0.25%不加EDTA的消化平滑肌细胞和内皮细胞效果都很好,在倒置显微镜下看到细胞有快一半变圆后,加含血清的培养液中和,都能将其吹打成单个细胞,以我看关键还是在消化过程和吹打的过程
star#room
(2012-8-02 15:26:27)
是不是团块太大了,消化之前先剪碎。同时,注意胶原酶中钙离子的浓度是否适当
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[求助]关于细胞吹打问题
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ending (2012-8-02 15:22:54)
可再用胶原酶消化
fox_79 (2012-8-02 15:23:15)
楼上的,胶原酶是和蛋白酶一起使用,还是先后使用,胶原酶用不用中和?用什么中和?
ending (2012-8-02 15:23:32)
单用即可,离心去除
831226 (2012-8-02 15:23:50)
我们实验室用夷梅消化,视细胞而定,通常可以肉眼看到细胞脱落为准,这时候加培养基中止消化,通常可以吹打下来
qumm1985 (2012-8-02 15:24:08)
我现在做乳腺癌细胞的原代培养,用的是胶原酶消化,结果细胞大部分是成团的。应该怎么办呢?应该用什么吹打细胞好啊?
fox_79 (2012-8-02 15:24:57)
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是啊,我也是用胰蛋白酶消化的,很难将细胞制成单细胞悬液,成团的比较多。
xingyi08 (2012-8-02 15:25:31)
胶原酶没办法中和,只能离心后丢弃
胰蛋白酶可以用血清中和
可以先在倒置显微镜下侦察下或者直接肉眼就可以看到成团的细胞,用吸管在其周围轻轻吹打.吹打均匀的细胞分散在培养液中是浑浊的液体而不是絮状漂浮物,注意某些细胞如心肌细胞比较娇嫩,小心力度
dog002 (2012-8-02 15:25:49)
pengke1983 (2012-8-02 15:26:08)
胶原酶只能离心去除的,我平时用0.25%不加EDTA的消化平滑肌细胞和内皮细胞效果都很好,在倒置显微镜下看到细胞有快一半变圆后,加含血清的培养液中和,都能将其吹打成单个细胞,以我看关键还是在消化过程和吹打的过程
star#room (2012-8-02 15:26:27)
是不是团块太大了,消化之前先剪碎。同时,注意胶原酶中钙离子的浓度是否适当
[求助]关于细胞吹打问题