【求助】请教细胞冻存过程中是否需要离心?

冻存细胞过程中需要离心吗?若需要的话,原理是什么呢?
究竟是常规消化后离心去上清然后加入冻存液还是直接加入冻存液呢,请高手指点。

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最新回复

  • BUK (2012-10-27 13:01:15)

    不需要吧!
    我们这里冻细胞,就是细胞长到一定密度,加入配置好的冻存液,就可以了,不需要离心
  • zhezhe (2012-10-27 13:01:41)

    不用离心的,看细胞长得状态好的话直接加入冻存液,吹散细胞,冻存就可以了
  • 小鱼鱼 (2012-10-27 13:02:11)


    最好离一下心,再重悬,使冻存液充分混于细胞。
  • gemei0115 (2012-10-27 13:02:43)


    还是离心一下比较好,按照ATCC的protocol,要获得良好的动物细胞冻存效果,这一步不可缺少。
    因为一般情况下,需使用胰酶消化细胞,才能下得来。中止消化要用到含血清的DMEM,而非含DMSO的冻存液,因为这样会消耗血清中固有的胰酶抑制物成分。我的做法是,终止消化后加培养液吹打成单个细胞,吸取少许快速计数细胞,同时100g离心3-5分钟(无需太高速及太长时间,目的使细胞下沉又尽量减少损伤),使细胞呈松软的小沉块。之后弃上清,加冻存液,吹打成均匀的悬液,冻存。老外甚至常规加做台盼兰活性检测。
  • tuuu2 (2012-10-27 13:03:50)


    我的经验:如果做细胞培养时间较长,在镜下观察细胞密度,应该大概估算出细胞密度,先用胰酶消化细胞,不要太久,大部分细胞不脱落而又能吹下来最好,吸去胰酶和悬浮的细胞(有损失),再按估算好的体积加入冻存液吹打细胞,收集至冻存管。这样做的目的一是减少离心损伤,二是减少操作步骤,三是避免胰酶和冻存液中的血清作用,供参考。
  • junjie05 (2012-10-27 13:04:20)


    1. 选择细胞状态佳的细胞。
    2。只用胰酶消化就可,消化好后弃酶,入冻存液吹散。
    3。封瓶直接冻存。这样对细胞的保护最好。

    注意:
    1。不用离心,离心为去凋忘细胞,细胞状态好时不用。
    2。处理的简单就是好,别信书本。
  • summerxx (2012-10-27 13:04:51)


    你消化好后弃酶不离心的吗?怎么弃去?
  • gogo (2012-10-27 13:05:17)


    当然要离心,调整细胞浓度后加冻存液
  • 831226 (2012-10-27 13:05:49)


    冻存过程中离心或不离心,我的经验是关系并不太大。但冻存过程中降温要慢,复苏时升温要快!这点很重要,也就是说慢冻速融的原则一定得遵循。
  • zsxan1990 (2012-10-27 13:06:09)


    要离心, 因为细胞冻存时需 5~10 x 10^6 细胞/ml,而培养到要换液时根本达不到此浓度。故应1000 rpm 5 分钟离心已浓缩细胞。还要注意,细胞冷冻保存时最常使用的冷冻培养基是含10 %DMSO 和90 % 原来细胞生长用之新鲜培养基的均匀混合物。由于DMSO 稀释时会放出大量热能, 故不可将DMSO 直接加入细胞液中, 必须使用前先行配制完成。